| 中文摘要 | 第1-11页 |
| 英文摘要 | 第11-14页 |
| 1 引言 | 第14-24页 |
| ·非生物胁迫与植物耐逆性相关基因 | 第14-17页 |
| ·温度胁迫 | 第14-15页 |
| ·水分胁迫 | 第15页 |
| ·高盐胁迫 | 第15-16页 |
| ·氧化胁迫 | 第16-17页 |
| ·解旋酶 | 第17-23页 |
| ·DEAD-box 解旋酶家族 | 第18-19页 |
| ·DEAD-box 解旋酶家族成员的功能 | 第19-20页 |
| ·DEAD-box 解旋酶与生物耐逆性 | 第20-21页 |
| ·DEAD-box 解旋酶提高植物耐逆性的机理 | 第21-23页 |
| ·本研究的目的和意义 | 第23-24页 |
| 2 材料与方法 | 第24-47页 |
| ·实验材料 | 第24-25页 |
| ·植物材料 | 第24页 |
| ·菌株与质粒 | 第24页 |
| ·PCR引物 | 第24-25页 |
| ·酶及生化试剂 | 第25页 |
| ·实验方法 | 第25-47页 |
| ·取材 | 第25-26页 |
| ·植物组织总RNA 的提取及检测 | 第26-28页 |
| ·反转录cDNA 第一条链的合成 | 第28-29页 |
| ·目的基因全长cDNA 的分离 | 第29-32页 |
| ·MH1-GFP 融合蛋白表达载体转化洋葱表皮细胞 | 第32-33页 |
| ·MH1 在紫花苜蓿中的表达分析（Northern 杂交） | 第33-35页 |
| ·紫花苜蓿中MH1 基因在胁迫处理后的表达分析（RT-PCR） | 第35-36页 |
| ·植物表达载体的构建 | 第36-38页 |
| ·农杆菌介导的拟南芥转化 | 第38-43页 |
| ·转基因植株耐逆实验 | 第43-44页 |
| ·转基因植株生理指标的测定 | 第44-47页 |
| 3 结果与分析 | 第47-66页 |
| ·紫花苜蓿解旋酶基因的分离 | 第47页 |
| ·MH1 基因的序列特征分析 | 第47-52页 |
| ·MH1 基因的核苷酸序列以及推导的氨基酸序列 | 第47-49页 |
| ·MH1 基因的序列分析 | 第49-52页 |
| ·MH1-GFP 融合蛋白的亚细胞定位 | 第52页 |
| ·MH1 基因在紫花苜蓿中的表达分析 | 第52-55页 |
| ·MH1 基因在紫花苜蓿不同器官中表达 | 第52-53页 |
| ·MH1 基因的表达受多种逆境胁迫诱导 | 第53-55页 |
| ·表达 MH1 基因提高转基因拟南芥的耐逆能力 | 第55-66页 |
| ·MH1 基因转化拟南芥 | 第55-56页 |
| ·转基因拟南芥的耐逆性分析 | 第56-62页 |
| ·表达MH1 基因提高拟南芥耐逆能力的生理基础 | 第62-64页 |
| ·MH1 基因的表达促进了某些逆境响应基因的表达 | 第64-66页 |
| 4 讨论 | 第66-69页 |
| ·MH1是定位于细胞核中的DEAD-box RNA解旋酶 | 第66-67页 |
| ·MH1基因在紫花苜蓿中的表达受多种逆境胁迫诱导 | 第67页 |
| ·表达MH1基因提高拟南芥的耐旱、耐盐和抗氧化胁迫能力 | 第67-68页 |
| ·表达MH1基因提高拟南芥耐逆性的生理与分子基础 | 第68-69页 |
| 5 结论 | 第69-70页 |
| 参考文献 | 第70-80页 |
| 附录 | 第80-83页 |
| 攻读硕士学位期间整理和发表的论文情况 | 第83-84页 |
| 致谢 | 第84页 |
