| 中文摘要 | 第1-7页 |
| 英文摘要 | 第7-11页 |
| 英文缩略词表 | 第11-12页 |
| 第一部分 文献综述 | 第12-45页 |
| 综述一 细胞周期调控与肿瘤治疗 | 第12-27页 |
| 综述二 抗肿瘤植物药活性成分研究概述 | 第27-45页 |
| 第二部分 动物整体抗肿瘤实验研究 | 第45-54页 |
| 前言 | 第45-46页 |
| 材料与方法 | 第46-47页 |
| 1 动物 | 第46页 |
| 2 药品及试剂 | 第46页 |
| 3 主要实验仪器 | 第46页 |
| 4 方法 | 第46-47页 |
| 4．1 荷瘤小鼠抑瘤实验方法 | 第46-47页 |
| 4．2 统计学处理方法 | 第47页 |
| 结果 | 第47-52页 |
| 1 Evo对S180荷瘤小鼠肿瘤重量的影响 | 第47-49页 |
| 2 Evo对 HepA荷瘤小鼠肿瘤重量的影响 | 第49-52页 |
| 讨论 | 第52-53页 |
| 参考文献 | 第53-54页 |
| 第三部分 药物体外抗肿瘤作用及其作用机制的研究 | 第54-95页 |
| 前言 | 第54-55页 |
| 材料与方法 | 第55-62页 |
| 1 肿瘤细胞株 | 第55页 |
| 2 药品及试剂 | 第55页 |
| 3 主要实验仪器 | 第55-56页 |
| 4 方法 | 第56-62页 |
| 4．1 细胞培养 | 第56页 |
| 4．2 细胞生长抑制实验 | 第56-57页 |
| 4．3 细胞分裂和集落形成能力检测方法 | 第57页 |
| 4．4 光镜观察细胞形态学改变 | 第57页 |
| 4．5 电镜观察细胞形态学改变 | 第57页 |
| 4．6 流式细胞仪测定细胞周期分布 | 第57页 |
| 4．7 Annexin V-FITC检测细胞早期凋亡 | 第57-58页 |
| 4．8 细胞的 DNA断裂片断分析 | 第58页 |
| 4．8．1 琼脂糖凝胶电泳检测 DNA片段化 | 第58页 |
| 4．8．2 TUNEL法 | 第58页 |
| 4．9 Caspase-8，3活力检测 | 第58-59页 |
| 4．10 流式细胞仪分析线粒体膜电位变化 | 第59页 |
| 4．11 Western免疫印记法检测蛋白的表达 | 第59-61页 |
| 4．11．1 工作液的配制 | 第59-60页 |
| 4．11．2 蛋白质电泳 | 第60页 |
| 4．11．3 免疫印迹 | 第60-61页 |
| 4．12 统计学分析 | 第61-62页 |
| 结果 | 第62-85页 |
| 1 Evo对10种人体肿瘤细胞增殖的影响 | 第62-63页 |
| 2 Evo对 SPC-Al肿瘤细胞分裂和集落形成能力的影响 | 第63-65页 |
| 3 Evo对 SPC-A1肿瘤细胞(光镜下)形态的影响 | 第65页 |
| 4 Evo对 SPC-Al肿瘤细胞(电镜下)形态的影响 | 第65页 |
| 5 Evo对 SPC-Al细胞早期凋亡的影响 | 第65-73页 |
| 6 Evo对肿瘤细胞增殖周期分布的影响 | 第73-77页 |
| 7 Evo诱导SPC-Al肿瘤细胞DNA片段化 | 第77页 |
| 7．1 琼脂糖凝胶电泳检测 | 第77页 |
| 7．2 APO-BRDU检测 | 第77页 |
| 8 Evo对 SPC-Al肿瘤细胞 Caspase-3，8活力的影响 | 第77页 |
| 9 Evo对 SPC-Al肿瘤细胞线粒体膜电位的影响 | 第77-83页 |
| 11 Evo对相关蛋白表达的影响 | 第83-85页 |
| 讨论 | 第85-92页 |
| 参考文献 | 第92-95页 |
| 结论 | 第95-96页 |
| 致谢 | 第96-97页 |
| 个人简历 | 第97页 |
