| 中文摘要(提要) | 第1-5页 |
| ABSTRACT | 第5-6页 |
| 目录 | 第6-8页 |
| 本论文专用术语(符号、变量、缩略词等)的注释表V | 第8-9页 |
| 绪论(前言) | 第9-11页 |
| 第一章 文献综述 | 第11-23页 |
| 1 HIBD发病机理的有关研究 | 第11-21页 |
| ·窒息后脑血流改变及能量衰竭 | 第11-12页 |
| ·神经元毒性 | 第12-13页 |
| ·神经元细胞内钙超载 | 第13页 |
| ·炎症细胞及炎性细胞因子的作用 | 第13页 |
| ·神经营养失衡学说 | 第13-15页 |
| ·细胞凋亡与线粒体异常 | 第15-21页 |
| 2 HIBD的治疗进展 | 第21-22页 |
| ·亚低温保护作用 | 第21页 |
| ·各类生长因子的应用 | 第21-22页 |
| 3 问题与展望 | 第22-23页 |
| 第二章 材料与方法 | 第23-33页 |
| 1 神经元细胞取材 | 第23页 |
| 2 试剂 | 第23-26页 |
| ·干预药物 | 第23页 |
| ·细胞培养相关试剂 | 第23页 |
| ·主要用液成分及配制 | 第23-24页 |
| ·RT－PCR有关试剂 | 第24-25页 |
| ·免疫组化相关试剂 | 第25-26页 |
| 3 主要仪器与材料 | 第26-27页 |
| 4 实验方法 | 第27-33页 |
| ·大鼠大脑皮层神经元细胞培养 | 第27-28页 |
| ·新生脑神经元细胞“缺氧缺血”损伤模型的建立 | 第28页 |
| ·倒置相差显微镜观察细胞 | 第28页 |
| ·MTT(四甲基偶氮唑蓝微量酶反应)观察细胞活力 | 第28页 |
| ·姬姆萨(Giema’s)染色观察细胞 | 第28-29页 |
| ·透射电镜观察细胞 | 第29页 |
| ·免疫细胞化学 | 第29-30页 |
| ·RT-PCR测AIF的mRNA表达 | 第30-31页 |
| ·统计方法 | 第31-32页 |
| ·实验技术路线 | 第32-33页 |
| 第三章 实验结果 | 第33-41页 |
| 1 倒置相差显微镜观察细胞 | 第33-34页 |
| 2 姬姆萨(Giema’s)染色观察细胞 | 第34页 |
| 3 透射电镜观察细胞 | 第34-35页 |
| 4 MTT(四甲基偶氮唑蓝微量酶反应)观察细胞活力 | 第35页 |
| 5 免疫细胞化学 | 第35-37页 |
| ·观察胞浆中Cyt-C的表达 | 第35-36页 |
| ·神经元细胞鉴定 | 第36-37页 |
| 6 RT-PCR测定AIF mRNA表达及相对含量 | 第37-41页 |
| 第四章 讨论 | 第41-50页 |
| 1 外培养神新生脑神经元细胞以建立缺氧缺血损伤模型 | 第41-42页 |
| ·体外培养新生脑神经元细胞 | 第41-42页 |
| ·新生脑神经元细胞缺氧缺血损伤模型 | 第42页 |
| 2 缺氧缺血性脑损伤发病机制 | 第42-46页 |
| ·细胞凋亡 | 第42-44页 |
| ·缺氧缺血性神经元细胞损伤与线粒体异常 | 第44-46页 |
| 3 神经生长因子对缺氧缺血性神经元细胞损伤的保护作用 | 第46-48页 |
| 4 问题与展望 | 第48-50页 |
| 第五章 结论 | 第50-51页 |
| 致谢 | 第51-52页 |
| 参考文献 | 第52-60页 |
| 作者简介及在学期间发表论文清单 | 第60-61页 |
| 本实验室HIBD凋亡相关研究索引 | 第61页 |
