| 摘要 | 第1-12页 |
| Abstract | 第12-16页 |
| 第一章 前言 | 第16-42页 |
| ·手性环氧化物的重要性 | 第16-19页 |
| ·手性环氧化物的化学合成方法 | 第19-21页 |
| ·前手性烯烃的不对称环氧化 | 第19-20页 |
| ·外消旋环氧化物的化学动力学拆分 | 第20-21页 |
| ·手性环氧化物的生物合成方法 | 第21-23页 |
| ·单加氧酶催化体系 | 第21-22页 |
| ·氯过氧化物酶催化体系 | 第22页 |
| ·环氧化物降解酶体系 | 第22-23页 |
| ·脂肪酶/酯酶水解体系 | 第23页 |
| ·环氧化物水解酶 | 第23-40页 |
| ·环氧化物水解酶概述 | 第23-24页 |
| ·环氧化物水解酶的作用机理 | 第24-27页 |
| ·微生物环氧化物水解酶的立体选择性 | 第27-36页 |
| ·单取代型底物 | 第28-29页 |
| ·苯乙烯环氧化物型底物 | 第29-33页 |
| ·双取代型底物 | 第33-36页 |
| ·三取代型底物 | 第36页 |
| ·环氧化物水解酶的性质 | 第36-38页 |
| ·环氧化物水解酶在手性合成中的应用 | 第38-39页 |
| ·环氧化物水解酶的最新研究进展 | 第39-40页 |
| ·生物学方面 | 第39-40页 |
| ·新型环氧化物水解酶和新型底物 | 第40页 |
| ·本研究的总体思路 | 第40-42页 |
| 第二章 双波长微板法测定细胞悬浮液中的环氧化物 | 第42-49页 |
| ·实验部分 | 第43-44页 |
| ·仪器与试剂 | 第43页 |
| ·实验方法 | 第43-44页 |
| ·结果与讨论 | 第44-47页 |
| ·测定波长的选择 | 第44-45页 |
| ·缓冲溶液与细胞悬浮液中测定结果的比较 | 第45-46页 |
| ·细胞悬浮液浓度对测定的影响 | 第46-47页 |
| ·环氧化物水解酶活力的测定 | 第47页 |
| ·小结 | 第47-49页 |
| 第三章 环氧化物水解酶产生菌的筛选与菌种鉴定 | 第49-69页 |
| ·高效毛细管电泳检测手性苯基乙二醇方法的建立 | 第49-53页 |
| ·仪器与试剂 | 第49-50页 |
| ·方法 | 第50页 |
| ·结果与讨论 | 第50-52页 |
| ·手性选择剂的种类对分离的影响 | 第50-51页 |
| ·缓冲溶液pH值对分离度的影响 | 第51页 |
| ·磺酰化β-环糊精含量对分离度及迁移时间的影响 | 第51-52页 |
| ·毛细管长度对分离度的影响 | 第52页 |
| ·小结 | 第52-53页 |
| ·环氧化物水解酶产生菌的筛选 | 第53-57页 |
| ·材料和方法 | 第53-55页 |
| ·仪器和试剂 | 第53页 |
| ·样品 | 第53页 |
| ·培养基 | 第53-54页 |
| ·菌株分离 | 第54页 |
| ·菌株初筛和复筛 | 第54页 |
| ·毛细管电泳分析条件 | 第54页 |
| ·液相色谱分析条件 | 第54-55页 |
| ·结果和讨论 | 第55-57页 |
| ·初筛 | 第55页 |
| ·复筛 | 第55-56页 |
| ·各菌株的底物特异性 | 第56-57页 |
| ·环氧化物水解酶产生菌BZS21的种属鉴定 | 第57-67页 |
| ·材料与方法 | 第57-60页 |
| ·形态与鞭毛观察 | 第57页 |
| ·生理生化鉴定方法 | 第57页 |
| ·16S rDNA测序法鉴定BZS21 | 第57-60页 |
| ·结果与讨论 | 第60-67页 |
| ·BZS21菌株的形态及生理生化特征 | 第60-62页 |
| ·16S rDNA测序法鉴定BZS21菌株 | 第62-67页 |
| ·结论 | 第67页 |
| ·本章小结 | 第67-69页 |
| 第四章 类产碱假单胞菌BZS21产酶与拆分条件的初步研究 | 第69-78页 |
| ·材料和方法 | 第69-70页 |
| ·仪器与试剂 | 第69页 |
| ·菌株 | 第69页 |
| ·发酵用基础培养基 | 第69页 |
| ·细胞悬液制备与转化 | 第69-70页 |
| ·生物量测定 | 第70页 |
| ·分析方法 | 第70页 |
| ·环氧化物水解酶活力的测定 | 第70页 |
| ·脂肪酶与酯酶活力测定 | 第70页 |
| ·酯酶抑制剂对酯酶活力与对映体选择性的影响 | 第70页 |
| ·结果与讨论 | 第70-77页 |
| ·碳源对生长与对映体选择性的影响 | 第71页 |
| ·氮源对生长与对映体选择性的影响 | 第71-73页 |
| ·类产碱假单胞菌BZS21的发酵过程 | 第73页 |
| ·细胞浓度对EPG拆分的影响 | 第73-74页 |
| ·pH值对EPG拆分的影响 | 第74页 |
| ·助溶剂对EPG拆分的影响 | 第74-76页 |
| ·类产碱假单胞菌BZS21菌株的酯酶活力与水解EPG时的对映体选择性 | 第76-77页 |
| ·本章小结 | 第77-78页 |
| 第五章 不同反应体系中苯基缩水甘油酸乙酯的拆分 | 第78-93页 |
| ·材料与方法 | 第79-81页 |
| ·材料与试剂 | 第79页 |
| ·培养基 | 第79页 |
| ·类产碱假单胞菌BZS21粗酶的制备 | 第79-80页 |
| ·类产碱假单胞菌BZS21粗酶的固定化 | 第80页 |
| ·两相体系中EPG的拆分 | 第80页 |
| ·不同有机溶剂对拆分的影响 | 第80页 |
| ·有机相比例对拆分的影响 | 第80页 |
| ·反应体系pH值对拆分的影响 | 第80页 |
| ·乳化体系中EPG的拆分 | 第80-81页 |
| ·不同表面活性剂对苯基缩水甘油酸乙酯拆分的影响 | 第80-81页 |
| ·表面活性剂浓度对拆分的影响 | 第81页 |
| ·体系pH值对拆分的影响 | 第81页 |
| ·环糊精诱导的乳化体系中EPG的拆分 | 第81页 |
| ·结果与讨论 | 第81-92页 |
| ·两相体系中EPG的拆分 | 第81-85页 |
| ·不同有机溶剂对拆分的影响 | 第81-82页 |
| ·有机溶剂含量对拆分的影响 | 第82-83页 |
| ·pH值对拆分的影响 | 第83-84页 |
| ·酶浓度和底物浓度对拆分的影响 | 第84-85页 |
| ·酶固定化对拆分的影响 | 第85页 |
| ·乳化体系中EPG的拆分 | 第85-89页 |
| ·不同表面活性剂对拆分的影响 | 第85-86页 |
| ·表面活性剂浓度对拆分的影响 | 第86-87页 |
| ·pH值对拆分的影响 | 第87-88页 |
| ·温度对拆分的影响 | 第88页 |
| ·转速对拆分的影响 | 第88页 |
| ·酶与底物浓度对拆分的影响 | 第88-89页 |
| ·环糊精诱导的乳化体系中EPG的拆分 | 第89-92页 |
| ·不同环糊精对拆分的影响 | 第89-90页 |
| ·环糊精浓度对拆分的影响 | 第90-91页 |
| ·底物浓度对拆分的影响 | 第91-92页 |
| ·本章小结 | 第92-93页 |
| 第六章 黑曲霉HNG5环氧化物水解酶的性质与苄基缩水甘油醚拆分 | 第93-103页 |
| ·材料与方法 | 第93-95页 |
| ·仪器与试剂 | 第93-94页 |
| ·菌株 | 第94页 |
| ·发酵培养基 | 第94页 |
| ·菌株培养与粗酶制备 | 第94页 |
| ·添加剂对酶活力的影响 | 第94页 |
| ·外消旋BGE拆分的动力学过程 | 第94-95页 |
| ·结果与讨论 | 第95-102页 |
| ·粗酶制备 | 第95页 |
| ·温度对酶活力的影响 | 第95-96页 |
| ·pH值对酶活力的影响 | 第96-97页 |
| ·金属离子对酶活力的影响 | 第97-98页 |
| ·有机溶剂对酶活力的影响 | 第98-99页 |
| ·表面活性剂对酶活力的影响 | 第99-100页 |
| ·外消旋BGE拆分的动力学过程 | 第100-101页 |
| ·高浓度底物的拆分 | 第101-102页 |
| ·本章小结 | 第102-103页 |
| 参考文献 | 第103-118页 |
| 在读期间已发表和录用的论文 | 第118-119页 |
| 致谢 | 第119-120页 |
| 学位论文评阅及答辩情况表 | 第120页 |
