| 摘要 | 第1-14页 |
| Abstract | 第14-18页 |
| 缩略词表 | 第18-19页 |
| 第一章 文献综述 | 第19-49页 |
| 第一节 家禽卵泡的发育过程 | 第19-23页 |
| ·家禽卵泡发育的特点及阶段划分 | 第19-21页 |
| ·家禽卵泡发生与闭锁 | 第21-23页 |
| 第二节 颗粒细胞和膜细胞在家禽卵泡发育中的作用 | 第23-28页 |
| ·颗粒细胞和膜细胞对卵泡发育的调控 | 第23-25页 |
| ·细胞间互作对卵泡发育的影响 | 第25-28页 |
| 第三节 可溶性化学信号分子在家禽卵泡发育中的作用 | 第28-41页 |
| ·激素对家禽卵泡发育的调控 | 第28-35页 |
| ·生长因子对家禽卵泡发育的调控 | 第35-41页 |
| 第四节 多不饱和脂肪酸和黄酮类化合物在畜禽生产中的作用 | 第41-47页 |
| ·多不饱和脂肪酸和黄酮类化合物的种类、性质、吸收与代谢 | 第41-42页 |
| ·多不饱和脂肪酸和黄酮类化合物生理功能 | 第42-44页 |
| ·多不饱和脂肪酸和黄酮类化合物在畜禽生产中的应用 | 第44-47页 |
| 第五节 本研究的目的和内容 | 第47-49页 |
| ·本研究的目的和意义 | 第47页 |
| ·研究目标和内容 | 第47-49页 |
| 第二章 鸡小黄卵泡外膜层细胞体外培养模型的建立和应用 | 第49-56页 |
| 1. 引言 | 第49页 |
| 2. 材料与方法 | 第49-53页 |
| ·实验动物 | 第49-50页 |
| ·主要器材 | 第50页 |
| ·主要试剂及配制 | 第50-51页 |
| ·小黄卵泡外膜层细胞的分离、纯化和培养 | 第51-52页 |
| ·3β-HSD染色鉴定 | 第52页 |
| ·BrdU免疫细胞化学染色 | 第52页 |
| ·细胞形态学观察 | 第52页 |
| ·数据分析 | 第52-53页 |
| 3. 结果 | 第53-54页 |
| ·小黄卵泡外膜层细胞培养 | 第53页 |
| ·小黄卵泡外膜层细胞鉴定 | 第53页 |
| ·LH对外膜层细胞增殖的影响 | 第53-54页 |
| 4. 讨论 | 第54-55页 |
| 5. 小结 | 第55-56页 |
| 第三章 前列腺素对鸡等级前小黄卵泡外膜层细胞的促增殖作用及其机理研究 | 第56-72页 |
| 1. 引言 | 第56-58页 |
| 2. 材料与方法 | 第58-63页 |
| ·实验动物 | 第58页 |
| ·主要器材 | 第58页 |
| ·主要试剂及配制 | 第58页 |
| ·外膜层细胞的培养和药物处理 | 第58-59页 |
| ·BrdU免疫细胞化学染色 | 第59页 |
| ·CREB1免疫细胞化学染色 | 第59页 |
| ·RNA提取和半定量RT-PCR | 第59-61页 |
| ·小黄卵泡体外培养及形态学观察 | 第61-62页 |
| ·细胞形态观察 | 第62页 |
| ·数据分析 | 第62-63页 |
| 3. 结果 | 第63-69页 |
| ·PGE_1和LH对外膜层细胞增殖的影响 | 第63-64页 |
| ·SC19220对PGE_1和LH诱导的外膜层细胞增殖作用的影响 | 第64页 |
| ·消炎痛对LH诱导的外膜层细胞增殖作用的影响 | 第64-65页 |
| ·PKA和PKC系统的变化 | 第65-67页 |
| ·CREB1在PGE_1对外膜层细胞促增殖中的介导作用 | 第67-68页 |
| ·PGE_1对细胞周期蛋白mRNA表达水平的影响 | 第68页 |
| ·PGE_1对体外培养小黄卵泡外膜层厚度和细胞数目影响 | 第68-69页 |
| 4. 讨论 | 第69-70页 |
| 5. 小结 | 第70-72页 |
| 第四章 前列腺素和胰岛素样生长因子的互作对鸡小黄卵泡外膜层细胞增殖的影响 | 第72-87页 |
| 1. 引言 | 第72-73页 |
| 2. 材料与方法 | 第73-78页 |
| ·实验动物 | 第73页 |
| ·主要器材 | 第73-74页 |
| ·主要试剂及配制 | 第74页 |
| ·外膜层细胞培养及药物处理 | 第74页 |
| ·BrdU免疫细胞化学染色 | 第74页 |
| ·RNA提取和半定量RT-PCR | 第74-75页 |
| ·Real-time RT-PCR | 第75-76页 |
| ·ELISA检测PGE_2含量 | 第76-77页 |
| ·小黄卵泡体外培养和药物处理及形态学观察 | 第77页 |
| ·细胞形态观察 | 第77页 |
| ·数据分析 | 第77-78页 |
| 3. 结果 | 第78-84页 |
| ·IGF-I和PGE_2对外膜层细胞增殖的影响 | 第78页 |
| ·AG1024、KP372-1、NS398对IGF-I诱导的外膜层细胞增殖作用的影响 | 第78-79页 |
| ·IGF-I对外膜层细胞COX2的表达和PGE_2含量的影响 | 第79-80页 |
| ·PGE_2对NS398抑制的由IGF-I诱导的外膜层细胞增殖作用的补救作用 | 第80-81页 |
| ·KP372-1和SC19220对PGE_2诱导的外膜层细胞增殖作用的影响 | 第81-82页 |
| ·PGE_2对外膜层细胞内COX2、IGF-IR表达的影响 | 第82-83页 |
| ·IGF-I和PGE_2对小黄卵泡外膜层厚度和细胞数目影响 | 第83-84页 |
| 4. 讨论 | 第84-86页 |
| 5. 小结 | 第86-87页 |
| 第五章 花生四烯酸对鸡小黄卵泡外膜层细胞增殖和功能的影响 | 第87-98页 |
| 1. 引言 | 第87-89页 |
| 2. 材料与方法 | 第89-92页 |
| ·实验动物 | 第89页 |
| ·主要器材 | 第89页 |
| ·主要试剂及配制 | 第89页 |
| ·外膜层细胞培养和处理 | 第89页 |
| ·BrdU免疫细胞化学染色 | 第89-90页 |
| ·MTT法测定外膜层细胞活性 | 第90页 |
| ·PKC免疫细胞化学染色 | 第90页 |
| ·外膜层细胞黏附特性检测 | 第90-91页 |
| ·Real-time RT-PCR | 第91页 |
| ·流式细胞术检测细胞周期 | 第91页 |
| ·细胞形态观察 | 第91页 |
| ·数据分析 | 第91-92页 |
| 3. 结果 | 第92-95页 |
| ·花生四烯酸对外膜层细胞增殖和活性的影响 | 第92页 |
| ·PKC系统对花生四烯酸作用的影响 | 第92-93页 |
| ·花生四烯酸对细胞粘附及粘附相关蛋白表达的影响 | 第93-94页 |
| ·花生四烯酸对细胞周期的影响 | 第94-95页 |
| 4. 讨论 | 第95-96页 |
| 5. 小结 | 第96-98页 |
| 第六章 槲皮素对镉引起的鸡小黄卵泡颗粒细胞毒性的缓解作用 | 第98-125页 |
| 1. 引言 | 第98-99页 |
| 2. 材料与方法 | 第99-114页 |
| ·实验动物 | 第99页 |
| ·主要器材 | 第99-100页 |
| ·主要试剂及配制 | 第100-101页 |
| ·颗粒细胞培养和药物处理 | 第101-102页 |
| ·细胞形态学观察 | 第102页 |
| ·MTT法测定颗粒细胞活性 | 第102页 |
| ·细胞抗氧化状态检测 | 第102-105页 |
| ·RNA提取和半定量RT-PCR | 第105页 |
| ·Western-blot | 第105-108页 |
| ·凋亡形态学检测 | 第108-110页 |
| ·Caspase-3活性检测 | 第110-112页 |
| ·DNA片段化检测 | 第112-113页 |
| ·流式细胞术检测细胞凋亡 | 第113-114页 |
| ·数据分析 | 第114页 |
| 3. 结果 | 第114-122页 |
| ·镉和槲皮素对颗粒细胞数目和活性的影响 | 第114-116页 |
| ·槲皮素对镉引起的氧化损伤的缓解作用 | 第116-117页 |
| ·槲皮素对镉诱导的凋亡相关基因表达影响 | 第117-118页 |
| ·槲皮素对镉诱导的颗粒细胞凋亡的影响 | 第118-122页 |
| 4. 讨论 | 第122-124页 |
| 5. 小结 | 第124-125页 |
| 第七章 结论和创新点 | 第125-127页 |
| 结论 | 第125-126页 |
| 创新点 | 第126-127页 |
| 参考文献 | 第127-146页 |
| 博士期间发表文章 | 第146-147页 |
| 致谢 | 第147页 |
