中文摘要 | 第8-11页 |
ABSTRACT | 第11-13页 |
英文缩略词表 | 第14-16页 |
前言 | 第16-18页 |
第一部分 MLIF对颅脑创伤的保护作用研究 | 第18-39页 |
1 实验材料和方法 | 第18-26页 |
1.1 实验材料 | 第18-20页 |
1.1.1 供试化合物 | 第18页 |
1.1.2 实验动物 | 第18-19页 |
1.1.3 主要试剂及耗材 | 第19页 |
1.1.4 仪器设备 | 第19-20页 |
1.2 实验方法 | 第20-26页 |
1.2.1 液压打击法制备大鼠颅脑创伤模型 | 第20-21页 |
1.2.2 大鼠实验设计分组 | 第21-22页 |
1.2.3 大鼠脑组织含水量的测定 | 第22页 |
1.2.4 大鼠脑组织HE染色 | 第22-23页 |
1.2.5 大鼠脑组织尼氏染色 | 第23页 |
1.2.6 大鼠脑组织TUNEL染色 | 第23-24页 |
1.2.7 大鼠血清中超氧化物歧化酶(SOD)含量检测 | 第24页 |
1.2.8 大鼠血清中丙二醛(MDA)含量检测 | 第24-25页 |
1.2.9 小鼠颅脑创伤模型的制备 | 第25页 |
1.2.10 小鼠实验设计分组 | 第25-26页 |
1.2.11 小鼠脑组织含水量的测定 | 第26页 |
1.2.12 小鼠脑组织HE染色 | 第26页 |
1.2.13 小鼠脑组织尼氏染色 | 第26页 |
1.3 统计学分析 | 第26页 |
2 实验结果 | 第26-36页 |
2.1 MLIF对颅脑创伤大鼠的保护作用 | 第26-34页 |
2.1.1 不同给药剂量MLIF对脑创伤大鼠脑组织含水量的影响 | 第26-28页 |
2.1.2 MLIF对脑创伤大鼠不同时间点脑含水量的影响 | 第28-29页 |
2.1.3 MLIF对脑创伤大鼠脑组织病理损伤的影响 | 第29-30页 |
2.1.4 MLIF对脑创伤大鼠脑组织神经元的影响 | 第30-31页 |
2.1.5 MLIF对脑创伤大鼠脑组织细胞凋亡的影响 | 第31-32页 |
2.1.6 MLIF对脑创伤大鼠血清中SOD和MDA的影响 | 第32-34页 |
2.2 MLIF对颅脑创伤小鼠的保护作用 | 第34-36页 |
2.2.1 MLIF对脑创伤小鼠脑含水量的影响 | 第34-35页 |
2.2.2 MLIF对脑创伤小鼠脑组织病理损伤的影响 | 第35-36页 |
3 讨论 | 第36-39页 |
第二部分 MLIF对颅脑创伤的保护作用机制研究 | 第39-61页 |
1 实验材料和方法 | 第39-51页 |
1.1 实验材料 | 第39-43页 |
1.1.1 实验药物 | 第39页 |
1.1.2 实验动物 | 第39-40页 |
1.1.3 主要试剂及耗材 | 第40-41页 |
1.1.4 溶液的配制 | 第41-42页 |
1.1.5 仪器设备 | 第42-43页 |
1.2 实验方法 | 第43-51页 |
1.2.1 大鼠颅脑创伤模型的制备 | 第43页 |
1.2.2 实验动物分组 | 第43页 |
1.2.3 免疫组化法检测大鼠脑组织AQP4的表达 | 第43-44页 |
1.2.4 免疫荧光法检测大鼠脑组织AQP4的表达 | 第44-45页 |
1.2.5 Real-timePCR法检测大鼠脑组织炎症因子mRNA水平的变化 | 第45-48页 |
1.2.6 WesternBlot法检测大鼠脑组织AQP4、Bax、Bcl-2蛋白表达 | 第48-51页 |
1.3 统计学分析 | 第51页 |
2 实验结果 | 第51-58页 |
2.1 MLIF对脑创伤大鼠脑组织中IL-1β、IL-6、TNF-αmRNA水平表达的影响 | 第51-53页 |
2.2 MLIF对脑创伤大鼠脑组织中AQP4表达的影响 | 第53-56页 |
2.2.1 免疫组化法检测脑创伤大鼠脑组织中AQP4的表达 | 第53-55页 |
2.2.2 免疫荧光法检测脑创伤大鼠脑组织中AQP4的表达 | 第55页 |
2.2.3 Westernblot法检测脑创伤大鼠脑组织中AQP4的表达 | 第55-56页 |
2.3 MLIF对脑创伤大鼠脑组织中Bax、Bcl-2表达的影响 | 第56-58页 |
2.3.1 Westernblot法检测脑创伤大鼠脑组织中Bax、Bcl-2的表达 | 第56-58页 |
3 讨论 | 第58-61页 |
全文总结 | 第61-62页 |
参考文献 | 第62-67页 |
综述 | 第67-77页 |
参考文献 | 第74-77页 |
个人简介 | 第77-78页 |
攻读硕士学位期间发表论文情况 | 第78-79页 |
致谢 | 第79页 |