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涡虫模式识别受体相关基因DjCTL和DjA2M的鉴定和功能研究

摘要第4-6页
ABSTRACT第6-7页
缩略表第8-13页
第一章 综述第13-36页
    1 涡虫综述第13-15页
        1.1 东亚三角涡虫第13页
        1.2 涡虫的器官分布第13-14页
        1.3 涡虫的再生第14-15页
        1.4 涡虫的免疫第15页
    2 转录组,转录组学第15-18页
        2.1 转录组与转录组学第15-16页
        2.2 新一代高通量测序技术第16页
        2.3 ILLUMINA/SOLEXA测序技术第16-17页
        2.4 转录组研究的重要意义第17-18页
    3 免疫系统(IMMUNESYSTEM)第18-23页
        3.1 无脊椎动物先天免疫系统第18-19页
        3.2 分子模式识别作用(MOLECULEPATTERNRECOGNITION)第19-23页
            3.2.1 病原相关分子模式第20页
            3.2.2 模式识别受体第20-23页
                3.2.2.1 肽聚糖识别蛋白(PGRPS)第20-21页
                3.2.2.3 革兰阴性菌结合蛋白(GNBPS)第21页
                3.2.2.4 清道夫受体(SCR)第21页
                3.2.2.5 C-型凝集素(CTL)第21-22页
                3.2.2.7 TOLL样受体(TLR)第22页
                3.2.2.8 纤维蛋白原样功能域免疫凝集素(FBN)第22-23页
    4 C-型凝集素第23-30页
        4.1 C-型凝集素的结构第23-24页
        4.2 C-型凝集素的二硫键第24页
        4.3 C-型凝集素的分类第24-30页
            4.3.1 蛋白聚糖(Lecticans/Hyalectans)第25-26页
            4.3.2 脱唾液酸糖蛋白和树突细胞受体(AsialoglycoproteinandDCreceptors)..第26-27页
            4.3.3 胶原凝素(Collectins)第27-28页
            4.3.4 选凝素(Selectins)第28页
            4.3.5 NK细胞受体(NK-cellreceptors)第28-29页
            4.3.6 多CTLD细胞内吞受体(Multi-CTLDendocyticreceptors)第29页
            4.3.7 Reg蛋白(Regproteins)第29-30页
        4.4 C-型凝集素在涡虫中的研究进展第30页
    5 Α2-巨球蛋白第30-33页
        5.1 Α2-巨球蛋白第30-31页
        5.2 Α2-巨球蛋白的结构第31页
        5.3 Α2-巨球蛋白的研究进展第31-32页
        5.4 Α2-巨球蛋白与补体C3的关系第32-33页
    6 研究意义、主要内容及技术路线第33-36页
第二章 涡虫的转录组测序和分析第36-44页
    1 引言第36页
    2 材料与方法第36-38页
        2.1 试验材料第36页
            2.1.1 东亚三角涡虫第36页
            2.1.2 试剂及仪器第36页
        2.2 实验方法第36-38页
            2.2.1 提取涡虫总RNA第36-37页
            2.2.2 cDNA文库的准备与转录组测序第37页
            2.2.3 序列拼接第37-38页
            2.2.4 相关分析第38页
    3 结果与分析第38-42页
        3.1 转录组原始与拼接结果统计第38-39页
        3.2 拼接结果长度分布统计第39-40页
        3.3 功能注释第40-42页
    4 讨论第42-44页
第三章 涡虫DJCTL基因的鉴定和功能初探第44-74页
    1 引言第44页
    2 材料与方法第44-57页
        2.1 试验材料第44-46页
            2.1.1 实验动物与、菌株与质粒第44-45页
            2.1.2 化学试剂及溶液第45-46页
            2.1.3 实验用主要仪器第46页
        2.2 试验方法第46-57页
            2.2.1 提取涡虫总RNA第46页
            2.2.2 涡虫RNA的反转录第46-47页
            2.2.3 涡虫DjCTL目的基因片段的扩增第47-48页
            2.2.4 RACE技术5'-cDNA及3'-cDNA模板的制备第48页
            2.2.5 DjCTL基因的3'-及5'-RACE扩增第48页
            2.2.6 PCR产物切胶纯化回收第48-49页
            2.2.7 沉降法纯化回收第49页
            2.2.8 质粒提取第49-50页
            2.2.9 重组载体的构建第50-51页
            2.2.10 蛋白诱导表达第51页
            2.2.11 蛋白纯化第51-52页
            2.2.12 蛋白复性与浓缩第52-53页
            2.2.13 Westernblot第53页
            2.2.14 抗体制备及检测第53页
            2.2.15 切片免疫组化第53-54页
            2.2.16 DIG标记的RNA探针合成及效率第54页
            2.2.17 原位杂交第54-55页
            2.2.18 实时定量PCR检测不同处理后涡虫DjCTL基因表达变化第55页
            2.2.19 兔红细胞凝聚试验第55-56页
            2.2.20 菌结合试验第56页
            2.2.21 菌凝集试验第56-57页
            2.2.22 DjCTL与PAMPs的结合检测第57页
            2.2.23 抑菌试验第57页
    3 结果与分析第57-70页
        3.1 涡虫DJCTL序列与系统进化分析第57-60页
            3.1.1 涡虫DjCTL基因序列信息第57-59页
            3.1.2 涡虫DjCTL同源性分析第59-60页
        3.2 涡虫DJCTL蛋白表达与抗体制备及检测第60-62页
        3.3 涡虫DJCTL基因和蛋白表达模式第62-64页
        3.4 涡虫DJCTL免疫功能初探第64-69页
            3.4.1 半定量分析DjCTL在LPS和PGN诱导下的表达变化第64页
            3.4.2 原核表达的重组蛋白DjCTL对兔血的凝聚(鉴定纯化蛋白的活性)第64-65页
            3.4.3 重组蛋白DjCTL对菌的结合能力第65-66页
            3.4.4 重组蛋白DjCTL对菌的凝集能力第66-67页
            3.4.5 重组蛋白DjCTL对PAMPs的结合能力第67-68页
            3.4.6 重组蛋白DjCTL的抑菌试验第68-69页
        3.5 涡虫DJCTL再生功能初探第69-70页
            3.5.1 半定量PCR分析DjCTL在再生早期的表达变化第69-70页
            3.5.2 原位杂交检测DjCTL在再生涡虫中的表达第70页
    4 结论第70页
    5 讨论第70-73页
    6 展望第73-74页
第四章 涡虫DJA2M基因的鉴定和功能初探第74-92页
    1 引言第74页
    2 材料与方法第74-78页
        2.1 试验材料第74-75页
            2.1.1 实验动物与、菌株与质粒第74页
            2.1.2 化学试剂及溶液第74-75页
            2.1.3 实验用主要仪器第75页
        2.2 试验方法第75-78页
            2.2.1 DjA2M相关引物设计第75-76页
            2.2.2 dsRNA合成第76-77页
            2.2.3 dsRNA的注射第77页
            2.2.4 兔血红细胞采集和预处理第77页
            2.2.5 溶血活性ACH50分析第77-78页
    3 结果与分析第78-89页
        3.1 涡虫DJA2M序列与系统进化分析第78-85页
            3.1.1 涡虫DjA2M基因序列信息第78页
            3.1.2 涡虫DjA2M功能区域第78-82页
            3.1.3 涡虫DjA2M的系统发育分析第82-85页
        3.2 涡虫DJA2M基因定位(原位杂交)第85-86页
        3.3 涡虫DJA2M免疫功能初探第86-89页
            3.3.1 半定量分析DjA2M在LPS和PGN诱导下的表达变化第86页
            3.3.2 RNA干扰DjA2M后涡虫表型变化第86-88页
            3.3.3 RNA干扰DjA2M后溶血活性ACH50测定第88-89页
    4 总结第89页
    5 讨论第89-90页
    6 展望第90-92页
参考文献第92-98页
攻读硕士期间取得的研究成果第98-99页
致谢第99-100页
附录第100-103页
    (一)PMD18-T的质粒图谱第100-101页
    (二)PCDNA3的质粒图谱第101-102页
    (三)PET28A的质粒图谱第102-103页
    (四)L4440的质粒图谱第103页

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