| 摘要 | 第4-6页 |
| ABSTRACT | 第6-7页 |
| 缩略词 | 第15-16页 |
| 引言 | 第16-25页 |
| 0.1 概述 | 第16-17页 |
| 0.2 糖毒性 | 第17-19页 |
| 0.2.1 多元醇通路的激活 | 第17-18页 |
| 0.2.2 糖基化终末产物(AGEs)的形成 | 第18页 |
| 0.2.3 PKC激活 | 第18页 |
| 0.2.4 氨基己糖途径的激活: | 第18-19页 |
| 0.3 硫辛酸抗氧化应激治疗前景 | 第19-21页 |
| 0.3.1 清除自由基 | 第20页 |
| 0.3.2 螯合金属离子 | 第20页 |
| 0.3.3 再生其他抗氧化剂 | 第20-21页 |
| 0.4 抗菌肽 | 第21-22页 |
| 0.5 主要实验方法技术概述 | 第22-24页 |
| 0.5.1 实时荧光定量反转录PCR(Real-time RT-PCR) | 第22-23页 |
| 0.5.2 酶联免疫吸附反应(ELISA) | 第23页 |
| 0.5.3 细胞凋亡 | 第23-24页 |
| 0.6 本文的目的及意义 | 第24-25页 |
| 第1章 小鼠胰岛β细胞MIN6功能的鉴定 | 第25-41页 |
| 1.1 引言 | 第25页 |
| 1.2 实验材料 | 第25-29页 |
| 1.2.1 细胞系 | 第25页 |
| 1.2.2 主要仪器和设备 | 第25-26页 |
| 1.2.3 试验所用主要试剂 | 第26-27页 |
| 1.2.4 溶液与培养基的配制 | 第27-29页 |
| 1.3 实验方法 | 第29-33页 |
| 1.3.1 细胞培养 | 第29页 |
| 1.3.2 台盼蓝染色鉴定细胞 | 第29页 |
| 1.3.3 小鼠胰岛素(INS) ELISA鉴定细胞系 | 第29-30页 |
| 1.3.4 Real-time RT PCR鉴定细胞系 | 第30-32页 |
| 1.3.5 MTT检测药物毒性及细胞活力 | 第32页 |
| 1.3.6 细胞冻存 | 第32-33页 |
| 1.3.7 统计方法 | 第33页 |
| 1.4 实验结果 | 第33-39页 |
| 1.4.1 细胞培养结果 | 第33页 |
| 1.4.2 台盼蓝染色结果 | 第33-34页 |
| 1.4.3 小鼠胰岛素(INS) ELISA鉴定细胞结果 | 第34-35页 |
| 1.4.4 Real-time RT PCR鉴定细胞结果 | 第35-36页 |
| 1.4.5 MTT检测药物毒性及细胞活力结果 | 第36-39页 |
| 1.5 本章小结 | 第39-41页 |
| 第2章 硫辛酸对小鼠胰岛β细胞MIN6高糖毒性的保护 | 第41-52页 |
| 2.1 引言 | 第41页 |
| 2.2 实验材料 | 第41-42页 |
| 2.2.1 实验所用主要试剂 | 第41页 |
| 2.2.2 溶液的配制 | 第41-42页 |
| 2.2.3 实验仪器 | 第42页 |
| 2.3 实验方法 | 第42-45页 |
| 2.3.1 细胞的培养与药物诱导 | 第42页 |
| 2.3.2 小鼠胰岛素(INS)ELISA测定胰岛素含量 | 第42-44页 |
| 2.3.3 Real-time RT-PCR检测小鼠胰岛素基因(INS)的表达 | 第44-45页 |
| 2.4 实验结果 | 第45-50页 |
| 2.4.1 小鼠胰岛素(INS) ELISA测定胰岛素含量 | 第45-48页 |
| 2.4.2 Real-time RT-PCR检测小鼠胰岛素基因(INS)的表达 | 第48-50页 |
| 2.5 本章小结 | 第50-52页 |
| 第3章 抗菌肽Dybowskin-2CDYa及AWRK6对小鼠胰岛β细胞MIN6高糖毒性的保护 | 第52-61页 |
| 3.1 引言 | 第52页 |
| 3.2 实验材料 | 第52-53页 |
| 3.2.1 实验所用主要试剂 | 第52页 |
| 3.2.2 溶液的配制 | 第52-53页 |
| 3.3 实验方法 | 第53-55页 |
| 3.3.1 细胞的培养与药物诱导 | 第53页 |
| 3.3.2 小鼠胰岛素(INS) ELISA测定胰岛素含量 | 第53-54页 |
| 3.3.3 Real-time RT-PCR检测小鼠胰岛素基因(INS)的表达 | 第54-55页 |
| 3.4 实验结果 | 第55-59页 |
| 3.4.1 抗菌肽Dybowskin-2CDYa、AWRK6对MIN6细胞分泌胰岛素ELISA | 第55-56页 |
| 3.4.2 Real-time RT PCR检测小鼠胰岛素基因(INS)的表达 | 第56-59页 |
| 3.5 本章小结 | 第59-61页 |
| 第4章 硫辛酸和抗菌肽对细胞凋亡的影响 | 第61-76页 |
| 4.1 引言 | 第61页 |
| 4.2 实验材料 | 第61页 |
| 4.2.1 实验所用主要试剂 | 第61页 |
| 4.2.2 溶液的配制 | 第61页 |
| 4.3 实验方法 | 第61-64页 |
| 4.3.1 Annexin V-FITC法检测细胞凋亡 | 第61-62页 |
| 4.3.2 TUNEL检测细胞凋亡 | 第62-64页 |
| 4.4 实验结果 | 第64-75页 |
| 4.4.1 Annexin V-FITC法检测细胞凋亡实验结果 | 第64-72页 |
| 4.4.2 TUNEL检测细胞凋亡实验结果 | 第72-75页 |
| 4.5 本章小结 | 第75-76页 |
| 结论 | 第76-78页 |
| 致谢 | 第78-79页 |
| 参考文献 | 第79-83页 |
| 攻读学位期间发表的学术论文及参加科研情况 | 第83页 |
