摘要 | 第2-3页 |
Abstract | 第3页 |
1 引言 | 第7-26页 |
1.1 活性氧物种的产生 | 第7-8页 |
1.2 活性氧荧光识别染料研究进展 | 第8-25页 |
1.2.1 次氯酸荧光识别染料的研究进展 | 第8-11页 |
1.2.2 羟基自由基荧光识别染料的研究进展 | 第11-13页 |
1.2.3 单线态氧荧光识别染料的研究进展 | 第13-16页 |
1.2.4 臭氧荧光识别染料的研究进展 | 第16-18页 |
1.2.5 过氧化氢荧光识别染料的研究进展 | 第18-23页 |
1.2.6 超氧阴离子荧光识别染料的研究进展 | 第23-25页 |
1.3 选题背景 | 第25-26页 |
2 用于检测细胞溶酶体内H_2O_2的近红外荧光识别染料 | 第26-44页 |
2.1 探针Lyso-H_2O_2的设计思想 | 第26页 |
2.2 探针Lyso-H_2O_2的结构以及识别机理 | 第26-27页 |
2.3 实验部分 | 第27-34页 |
2.3.1 实验试剂与仪器 | 第27-28页 |
2.3.2 探针Lyso-H_2O_2的合成路线 | 第28页 |
2.3.3 探针Lyso-H_2O_2的合成方法 | 第28-29页 |
2.3.4 探针分子Lyso-H_2O_2的光谱测试 | 第29-31页 |
2.3.5 探针分子Lyso-H_2O_2对H_2O_2最低检测限的计算 | 第31页 |
2.3.6 表观速率常数k’的计算 | 第31页 |
2.3.7 生物实验 | 第31-34页 |
2.4 结果与讨论 | 第34-43页 |
2.4.1 探针分子Lyso-H_2O_2对H_2O_2的浓度滴定 | 第34-35页 |
2.4.2 探针分子Lyso-H_2O_2对H_2O_2的时间响应 | 第35-36页 |
2.4.3 探针分子Lyso-H_2O_2对常见干扰物的选择性 | 第36页 |
2.4.4 pH对探针分子Lyso-H_2O_2反应性的影响 | 第36-37页 |
2.4.5 探针分子Lyso-H_2O_2在细胞内对H_2O_2时间响应 | 第37-38页 |
2.4.6 探针分子Lyso-H_2O_2对MCF-7细胞内源性H_2O_2的成像 | 第38-39页 |
2.4.7 探针分子Lyso-H_2O_2的亚细胞器共定位成像 | 第39-40页 |
2.4.8 探针分子Lyso-H_2O_2的细胞毒性测试 | 第40页 |
2.4.9 探针Lyso-H_2O_2水蚤对内源性H_2O_2的成像 | 第40-41页 |
2.4.10 探针Lyso-H_2O_2在组织中与H_2O_2的反应性实验 | 第41-42页 |
2.4.11 探针Lyso-H_2O_2对H_2O_2响应机理的验证 | 第42-43页 |
2.5 本章小结 | 第43-44页 |
3 用于细胞内超氧阴离子识别的近红外荧光染料 | 第44-58页 |
3.1 探针BDOP的设计思想 | 第44页 |
3.2 探针BDOP的结构以及识别机理 | 第44-45页 |
3.3 实验部分 | 第45-49页 |
3.3.1 实验试剂与仪器 | 第45页 |
3.3.2 探针BDOP的合成步骤 | 第45页 |
3.3.3 探针BDOP的合成方法 | 第45-47页 |
3.3.4 探针BDOP的光谱学测试方法 | 第47-48页 |
3.3.5 探针BDOP对O_2·~?最低检测限的计算 | 第48页 |
3.3.6 生物学测试 | 第48-49页 |
3.4 结果与讨论 | 第49-57页 |
3.4.1 探针BDOP的吸收与发射光谱 | 第49-50页 |
3.4.2 探针BDOP光稳定性测试 | 第50页 |
3.4.3 探针BDOP对O_2·~?的浓度滴定 | 第50-51页 |
3.4.4 探针BDOP对O_2·~?的选择性测 | 第51-52页 |
3.4.5 探针BDOP对O_2·~?的时间相应 | 第52-53页 |
3.4.6 探针BDOP对pH稳定测试 | 第53页 |
3.4.7 BDOP细胞毒性测试 | 第53-54页 |
3.4.8 探针分子BDOP对Raw264.7细胞内源性O_2·~?荧光成像 | 第54-55页 |
3.4.9 探针分子BDOP应用于流式细胞分析 | 第55-56页 |
3.4.10 小鼠成像 | 第56-57页 |
3.4.11 探针BDOP对O_2·~?响应机理的验证 | 第57页 |
3.5 本章小结 | 第57-58页 |
结论 | 第58-59页 |
参考文献 | 第59-64页 |
附录A 部分化合物的结构表征 | 第64-68页 |
致谢 | 第68-70页 |