| 中文摘要 | 第8-11页 |
| Abstract | 第11-14页 |
| 第一章 文献综述 | 第15-35页 |
| 1. 植物叶、根的发育机制研究进展 | 第15-19页 |
| 1.1 叶发育的调控机制 | 第15-17页 |
| 1.2 根系发育的调控机制 | 第17-19页 |
| 2. 植物耐盐碱机制研究进展 | 第19-23页 |
| 2.1 植物对盐胁迫的应答机制 | 第19-21页 |
| 2.2 植物碱胁迫应答研究进展 | 第21-22页 |
| 2.3 发育过程与盐碱胁迫应答的关系 | 第22-23页 |
| 3. miRNA与发育调控和非生物胁迫应答 | 第23-26页 |
| 3.1 miRNA功能的研究进展 | 第23-25页 |
| 3.2 小麦miRNA的研究现状 | 第25-26页 |
| 4. NAC类转录因子调控植物生长发育和胁迫应答 | 第26-30页 |
| 4.1 植物NAC类转录因子的功能调控 | 第26-28页 |
| 4.2 NAC与植物发育和胁迫应答 | 第28-29页 |
| 4.3 小麦中NAC的研究进展 | 第29-30页 |
| 5. 线粒体功能与植物的生长发育和胁迫应答 | 第30-34页 |
| 5.1 线粒体与能量代谢 | 第30-31页 |
| 5.2 线粒体与ROS稳态 | 第31页 |
| 5.3 线粒体逆行调控 | 第31-32页 |
| 5.4 线粒体蛋白BCS1 | 第32-33页 |
| 5.5 线粒体蛋白LETM | 第33-34页 |
| 6. 立题依据 | 第34-35页 |
| 第二章 小麦渐渗系转录组的发育与盐碱胁迫应答特征 | 第35-52页 |
| 1 引言 | 第35页 |
| 2 实验材料 | 第35页 |
| 3 实验方法 | 第35-36页 |
| 3.1 小麦的培养和处理 | 第35页 |
| 3.2 转录组数据分析 | 第35-36页 |
| 4 结果与分析 | 第36-49页 |
| 4.1 SR3发育与盐胁迫差异表型的转录组分析 | 第36-42页 |
| 4.2 SR4根系发育与盐、碱胁迫差异表型的转录组分析 | 第42-49页 |
| 5 讨论 | 第49-52页 |
| 5.1 氧化稳态与小麦生长发育和盐胁迫应答密切相关 | 第49-50页 |
| 5.2 能量代谢可能与盐胁迫应答和发育过程均关系密切 | 第50-51页 |
| 5.3 转录调控参与调控生长发育和胁迫应答过程 | 第51-52页 |
| 第三章 miRNA与小麦根系发育及盐碱胁迫调控 | 第52-79页 |
| 1 引言 | 第52页 |
| 2 实验材料 | 第52-53页 |
| 2.1 植物材料 | 第52页 |
| 2.2 菌株和载体 | 第52-53页 |
| 3 实验方法 | 第53-56页 |
| 3.1 植物材料培养和处理 | 第53页 |
| 3.2 叶片电导率测定 | 第53页 |
| 3.3 sRNA测序和降解组测序 | 第53-54页 |
| 3.4 测序数据分析 | 第54页 |
| 3.5 qRT-PCR | 第54-55页 |
| 3.6 烟草GUS实验 | 第55页 |
| 3.7 RLM 5'-RACE实验 | 第55-56页 |
| 4 实验结果与分析 | 第56-75页 |
| 4.1 渐渗系胁迫与发育表型分析 | 第56-58页 |
| 4.2 sRNA高通量测序 | 第58-61页 |
| 4.3 miRNA的差异表达分析 | 第61-65页 |
| 4.4 miRNA靶基因的预测和鉴定 | 第65-67页 |
| 4.5 miRNA靶基因的功能分析 | 第67-75页 |
| 5 讨论 | 第75-79页 |
| 5.1 ROS可能参与miRNA对发育和盐碱胁迫应答的调控 | 第75-76页 |
| 5.2 miRNA对发育和盐碱胁迫应答的调控与能量代谢关系密切 | 第76-77页 |
| 5.3 miRNA调控小麦发育或胁迫应答过程中的信号转导 | 第77页 |
| 5.4 转录调控普遍涉及miRNA对发育或胁迫应答的调控过程 | 第77-79页 |
| 第四章 小麦渐渗系调控盐碱胁迫抗性与发育的关键基因通路 | 第79-116页 |
| 1 引言 | 第79-80页 |
| 2 实验材料 | 第80页 |
| 2.1 植物材料 | 第80页 |
| 2.2 菌株和载体 | 第80页 |
| 3 实验方法 | 第80-88页 |
| 3.1 植物材料培养和处理 | 第80-81页 |
| 3.2 叶片侧量与叶细胞观测 | 第81页 |
| 3.3 ROS含量检测 | 第81-82页 |
| 3.4 qRT-PCR | 第82页 |
| 3.5 载体构建和遗传转化 | 第82页 |
| 3.6 转录组数据分析 | 第82-83页 |
| 3.7 进化分析 | 第83页 |
| 3.8 亚细胞定位 | 第83页 |
| 3.9 EMSA实验 | 第83-84页 |
| 3.10 染色质免疫共沉淀实验(ChIP assay) | 第84-85页 |
| 3.11 酵母双杂交 | 第85页 |
| 3.12 双分子荧光互补实验(BiFC) | 第85-86页 |
| 3.13 蛋白-蛋白免疫共沉淀(Co-IP)实验 | 第86页 |
| 3.14 Western Blot | 第86页 |
| 3.15 ATP含量检测 | 第86-87页 |
| 3.16 淀粉染色和定量检测实验 | 第87页 |
| 3.17 流式细胞仪检测细胞核倍性 | 第87-88页 |
| 4 结果与分析 | 第88-111页 |
| 4.1 Tasro1与SR3叶片发育促进有关 | 第88-89页 |
| 4.2 Tasro1的互作蛋白TaSIN负调控叶片尺寸 | 第89-91页 |
| 4.3 TaSIN调控发育相关基因的表达 | 第91-94页 |
| 4.4 小麦BCS1同源基因参与调控叶片发育 | 第94-99页 |
| 4.5 Ta BCS1b的互作蛋白TaLETM2参与调控叶片发育 | 第99-104页 |
| 4.6 Tasro1 -TaSIN-TaBCS1b-TaLETM2对ROS的调控作用 | 第104-105页 |
| 4.8 Tasro1-TaSIN-TaBCS-1b-TaLETM2影响ATP合成和淀粉积累 | 第105-108页 |
| 4.9 TaSIN-TaBCS1b-TaLETM2参与细胞周期调控 | 第108-111页 |
| 5 讨论 | 第111-116页 |
| 5.1 能量稳态是调控叶片尺寸的重要因子 | 第111-112页 |
| 5.2 TaBCS1-TaLETM2共同调控能量稳态 | 第112页 |
| 5.3 Tasro1与TaSIN相互拮抗地调控叶片尺寸 | 第112-113页 |
| 5.4 小麦叶片尺寸调控与细胞周期和叶细胞倍性有关 | 第113-114页 |
| 5.5 Tasro1-TaSIN同时调控叶片发育与盐胁迫应答 | 第114-116页 |
| 总结 | 第116-117页 |
| 附表 | 第117-121页 |
| 参考文献 | 第121-134页 |
| 在读期间论文发表情况 | 第134-135页 |
| 在读期间参与科研项目 | 第135-136页 |
| 致谢 | 第136-137页 |
| 学位论文评阅及答辩情况表 | 第137页 |
