| 摘要 | 第4-6页 |
| abstract | 第6-7页 |
| 第1章 引言 | 第12-20页 |
| 1.1 γ-癸内酯简介 | 第12-13页 |
| 1.2 GDL的制备方法 | 第13-14页 |
| 1.2.1 化学合成法制备GDL | 第13页 |
| 1.2.2 直接提取法制备GDL | 第13-14页 |
| 1.2.3 微生物法制备GDL | 第14页 |
| 1.2.3.1 生物合成法 | 第14页 |
| 1.2.3.2 生物转化法 | 第14页 |
| 1.2.3.3 生物催化法 | 第14页 |
| 1.3 生物转化法制备GDL的研究现状 | 第14-17页 |
| 1.3.1 生物转化法制备GDL的代谢机理 | 第15-16页 |
| 1.3.2 GDL的降解路径 | 第16页 |
| 1.3.3 基因工程菌的构建 | 第16页 |
| 1.3.4 菌种的筛选及诱变 | 第16页 |
| 1.3.5 发酵过程中溶氧的调节 | 第16-17页 |
| 1.3.6 细胞固定化技术 | 第17页 |
| 1.3.7 分散剂对GDL的转化的影响 | 第17页 |
| 1.4 原位分离体系的介绍 | 第17-18页 |
| 1.5 蛭石简介 | 第18页 |
| 1.6 本文的研究意义与研究内容 | 第18-20页 |
| 第2章 GDL高产菌株的筛选优化与高浓度底物对转化GDL的影响 | 第20-31页 |
| 2.1 前言 | 第20页 |
| 2.2 材料与方法 | 第20-23页 |
| 2.2.1 实验材料 | 第20-21页 |
| 2.2.2 菌种 | 第21页 |
| 2.2.3 实验方法 | 第21-23页 |
| 2.2.3.1 菌种的筛选 | 第21页 |
| 2.2.3.2 生物转化条件的优化 | 第21-22页 |
| 2.2.3.3 不同浓度蓖麻油酸对于GDL产量的影响 | 第22-23页 |
| 2.2.3.4 GDL高产菌株MF-Y11产物生成曲线与底物消耗曲线的绘制 | 第23页 |
| 2.2.3.5 底物蓖麻油酸与产物GDL的检测 | 第23页 |
| 2.3 结果与讨论 | 第23-30页 |
| 2.3.1 GDL高产菌株的筛选 | 第23-24页 |
| 2.3.2 生物转化条件的优化 | 第24-28页 |
| 2.3.3 不同浓度蓖麻油酸对于GDL产量的影响 | 第28-29页 |
| 2.3.4 GDL高产菌株MF-Y11产物生成曲线与底物消耗曲线的绘制 | 第29-30页 |
| 2.4 本章小结 | 第30-31页 |
| 第3章 蓖麻油酸钙对于生物转化GDL的初探 | 第31-40页 |
| 3.1 前言 | 第31页 |
| 3.2 材料与方法 | 第31-33页 |
| 3.2.1 实验材料 | 第31-32页 |
| 3.2.2 菌种 | 第32页 |
| 3.2.3 实验方法 | 第32-33页 |
| 3.2.3.1 蓖麻油酸钙转化机理的初探 | 第32页 |
| 3.2.3.2 添加不同浓度蓖麻油酸钙对于GDL产量的影响 | 第32-33页 |
| 3.2.3.3 蓖麻油酸钙和蓖麻油酸对于转化GDL的比较 | 第33页 |
| 3.2.3.4 Ca~(2+)对于酵母转化GDL的影响 | 第33页 |
| 3.3 结果与讨论 | 第33-38页 |
| 3.3.1 蓖麻油酸钙转化机理的初探 | 第33-37页 |
| 3.3.2 添加不同浓度蓖麻油酸钙对于GDL产量的影响 | 第37页 |
| 3.3.3 蓖麻油酸钙和蓖麻油酸对于转化GDL的比较 | 第37-38页 |
| 3.3.4 Ca~(2+)对于酵母转化GDL的影响 | 第38页 |
| 3.4 本章小结 | 第38-40页 |
| 第4章 不同底物处理方式对生物转化GDL的影响 | 第40-52页 |
| 4.1 前言 | 第40页 |
| 4.2 材料与方法 | 第40-43页 |
| 4.2.1 实验材料 | 第40-41页 |
| 4.2.2 菌种 | 第41页 |
| 4.2.3 实验方法 | 第41-43页 |
| 4.2.3.1 不同的极性有机溶剂对于GDL产量的影响 | 第41-42页 |
| 4.2.3.2 不同浓度丙酮对于GDL产量的影响 | 第42页 |
| 4.2.3.3 1%丙酮添加量对GDL转化体系的影响 | 第42页 |
| 4.2.3.4 改性蛭石吸附包埋蓖麻油酸转化GDL的研究 | 第42页 |
| 4.2.3.5 改性蛭石吸附包埋蓖麻油酸包埋物的表征 | 第42-43页 |
| 4.2.3.6 生物转化体系中改性蛭石吸附包埋蓖麻油酸转化GDL | 第43页 |
| 4.3 结果与讨论 | 第43-50页 |
| 4.3.1 不同的极性有机溶剂对于生物转化GDL的影响 | 第43-44页 |
| 4.3.2 不同浓度丙酮对于GDL产量的影响 | 第44页 |
| 4.3.3 1%丙酮添加量对GDL转化体系的影响 | 第44-45页 |
| 4.3.4 改性蛭石吸附包埋蓖麻油酸转化GDL的研究 | 第45-47页 |
| 4.3.5 改性蛭石吸附包埋蓖麻油酸包埋物的表征 | 第47-49页 |
| 4.3.6 生物转化体系中改性蛭石吸附包埋蓖麻油酸转化GDL | 第49-50页 |
| 4.4 本章小结 | 第50-52页 |
| 第5章 固定化细胞转化生产GDL的初探 | 第52-62页 |
| 5.1 前言 | 第52页 |
| 5.2 材料与方法 | 第52-55页 |
| 5.2.1 实验材料 | 第52-53页 |
| 5.2.2 菌种 | 第53页 |
| 5.2.3 实验方法 | 第53-55页 |
| 5.2.3.1 不同固定化材料对生物转化GDL的影响 | 第53-54页 |
| 5.2.3.2 海藻酸钠与凹凸棒石复合凝胶球的强化 | 第54页 |
| 5.2.3.3 CaCl2添加浓度的确定 | 第54页 |
| 5.2.3.4 固定化细胞可重复使用性的测试 | 第54-55页 |
| 5.2.3.5 不同转化温度对于GDL转化的影响 | 第55页 |
| 5.2.3.6 底物包埋对于GDL转化的影响 | 第55页 |
| 5.3 结果与讨论 | 第55-60页 |
| 5.3.1 不同固定化材料对生物转化GDL的影响 | 第55-56页 |
| 5.3.2 海藻酸钠与凹凸棒石复合凝胶球的强化 | 第56-58页 |
| 5.3.3 CaCl2添加浓度的确定 | 第58页 |
| 5.3.4 固定化细胞可重复使用性的测试 | 第58-59页 |
| 5.3.5 不同转化温度对于GDL转化的影响 | 第59-60页 |
| 5.3.6 底物包埋对于GDL转化的影响 | 第60页 |
| 5.4 本章小结 | 第60-62页 |
| 第6章 液-液两相体系对于生物转化GDL的研究 | 第62-71页 |
| 6.1 前言 | 第62页 |
| 6.2 材料与方法 | 第62-64页 |
| 6.2.1 实验材料 | 第62-63页 |
| 6.2.2 菌种 | 第63页 |
| 6.2.3 实验方法 | 第63-64页 |
| 6.2.3.1 添加不同非极性有机溶剂对于生物转化GDL的影响 | 第63页 |
| 6.2.3.2 添加不同浓度DC345对于生物转化GDL的影响 | 第63-64页 |
| 6.2.3.3 产物抑制作用的验证 | 第64页 |
| 6.2.3.4 利用DC345进行液-液两相体系生物转化GDL5L发酵罐实验 | 第64页 |
| 6.3 结果与讨论 | 第64-70页 |
| 6.3.1 添加不同非极性有机溶剂对于生物转化GDL的影响 | 第64-66页 |
| 6.3.2 添加不同浓度DC345对于生物转化GDL的影响 | 第66页 |
| 6.3.3 产物抑制作用的验证 | 第66-68页 |
| 6.3.4 利用DC345进行液-液两相体系生物转化GDL5L发酵罐实验 | 第68-70页 |
| 6.4 本章小结 | 第70-71页 |
| 第7章 结论与展望 | 第71-73页 |
| 参考文献 | 第73-79页 |
| 致谢 | 第79-80页 |
| 攻读学位期间所开展的科研项目和发表的学术论文 | 第80页 |
