| 致谢 | 第7-8页 |
| 摘要 | 第8-10页 |
| Abstract | 第10-12页 |
| 缩略词表 | 第13-19页 |
| 第一章 文献综述 | 第19-33页 |
| 1 概述 | 第19-22页 |
| 1.1 水稻田杂草发生概况 | 第19-20页 |
| 1.2 水稻田除草剂使用概况 | 第20-21页 |
| 1.3 水稻田杂草防治中存在的问题 | 第21-22页 |
| 2 类生长激素型除草剂二氯喹啉酸和水杨酸的应用研究 | 第22-27页 |
| 2.1 二氯喹啉酸的使用及药害 | 第22-23页 |
| 2.2 二氯喹啉酸的作用机理 | 第23-24页 |
| 2.3 除草剂解毒机理 | 第24-26页 |
| 2.4 水杨酸的生理生化作用及其相关研究进展 | 第26-27页 |
| 3 作物生理信息的快速检测 | 第27-29页 |
| 3.1 作物生理快速无损检测的发展与现状 | 第27-28页 |
| 3.2 高光谱成像技术的原理及应用 | 第28-29页 |
| 4 高通量测序技术及其在转录组的应用 | 第29-30页 |
| 4.1 二代测序技术 | 第29页 |
| 4.2 转录组学研究 | 第29-30页 |
| 5 蛋白组学研究进展 | 第30-31页 |
| 5.1 蛋白组学的发展 | 第30-31页 |
| 5.2 iTRAQ标记技术及其在蛋白组学的应用 | 第31页 |
| 6 研究目的 | 第31-33页 |
| 第二章 二叶期水稻幼苗对四种除草剂敏感性比较分析 | 第33-44页 |
| 前言 | 第33页 |
| 1 材料与方法 | 第33-36页 |
| 1.1 试验材料 | 第33-34页 |
| 1.2 试验设计 | 第34页 |
| 1.3 抗氧化物酶测定 | 第34-35页 |
| 1.4 透射电子显微镜下叶片和根切片观察 | 第35-36页 |
| 1.5 数据分析 | 第36页 |
| 2 结果与分析 | 第36-41页 |
| 2.1 不同浓度除草剂处理对水稻叶片和根鲜重的影响 | 第36-37页 |
| 2.2 四种除草剂对抗氧化酶的影响 | 第37-38页 |
| 2.3 四种除草剂对叶片超显微结构的影响 | 第38-41页 |
| 3 讨论 | 第41-44页 |
| 第三章 外源SA对二氯喹啉酸胁迫下水稻幼苗生理生化的影响 | 第44-63页 |
| 前言 | 第44-45页 |
| 1 材料与方法 | 第45-48页 |
| 1.1 试验材料 | 第45页 |
| 1.2 试验设计 | 第45页 |
| 1.3 生物量和叶绿素测定 | 第45页 |
| 1.4 丙二醛(MDA)和ROS的测定 | 第45-46页 |
| 1.5 抗氧化酶的测定 | 第46页 |
| 1.6 谷胱甘肽和谷胱甘肽转移酶的测定 | 第46-47页 |
| 1.7 透射电子显微镜下超微结构研究 | 第47页 |
| 1.8 组织化学染色分析 | 第47页 |
| 1.9 RNA的提取和qRT-PCR | 第47-48页 |
| 2 结果与分析 | 第48-55页 |
| 2.1 二氯喹啉酸和SA对水稻生长的影响 | 第48页 |
| 2.2 二氯喹啉酸和SA对MDA和ROS影响 | 第48-49页 |
| 2.3 二氯喹啉酸和SA对非抗氧化酶的活性的影响 | 第49-53页 |
| 2.4 二氯喹啉酸和SA对抗氧化酶活性的影响 | 第53页 |
| 2.5 二氯喹啉酸和SA对谷胱甘肽转移酶含量的影响 | 第53页 |
| 2.6 二氯喹啉酸和SA诱导的组织化学变化 | 第53-54页 |
| 2.7 二氯喹啉酸和SA对超显微结构下叶肉细胞和根尖细胞的影响 | 第54页 |
| 2.8 二氯喹啉酸和SA对ABA相关的基因表达的影响 | 第54-55页 |
| 3 讨论 | 第55-63页 |
| 第四章 基于高光谱成像技术的水稻二氯喹啉酸药害识别 | 第63-86页 |
| 前言 | 第63页 |
| 1 材料与方法 | 第63-70页 |
| 1.1 试验材料 | 第63-64页 |
| 1.2 实验设备 | 第64-67页 |
| 1.3 样品制备 | 第67-68页 |
| 1.4 高光谱图像采集 | 第68页 |
| 1.5 生理指标测定 | 第68页 |
| 1.6 光谱信息提取与分析 | 第68-70页 |
| 1.7 最佳波长选择和图像可视化 | 第70页 |
| 2 结果与分析 | 第70-82页 |
| 2.1 不同处理的水稻叶片和根的光谱特征 | 第70-71页 |
| 2.2 基于原始光谱的PCA分析 | 第71-76页 |
| 2.3 生理指标的分析 | 第76页 |
| 2.4 全光谱的SVM模型 | 第76-78页 |
| 2.5 最佳波长的筛选 | 第78页 |
| 2.6 基于最佳波长的SVM模型 | 第78-81页 |
| 2.7 图像可视化 | 第81-82页 |
| 3 讨论 | 第82-86页 |
| 第五章 水稻二氯喹啉酸胁迫下水杨酸诱导的转录组分析 | 第86-109页 |
| 前言 | 第86页 |
| 1 材料与方法 | 第86-90页 |
| 1.1 试验材料 | 第86页 |
| 1.2 试验设计 | 第86-87页 |
| 1.3 RNA纯化和建库准备转录分析 | 第87页 |
| 1.4 Illumina测序结果的分析 | 第87-88页 |
| 1.5 差异基因的GO和KEGG富集分析 | 第88-89页 |
| 1.6 qRT-PCR分析 | 第89-90页 |
| 2 结果与分析 | 第90-104页 |
| 2.1 RNA-Seq的初步分析结果 | 第90页 |
| 2.2 差异基因表达分析 | 第90-92页 |
| 2.3 差异基因的GO和pathway显著性富集分析 | 第92-98页 |
| 2.4 MapMan分析的代谢总图 | 第98-99页 |
| 2.5 差异基因的RT-PCR验证 | 第99页 |
| 2.6 SA诱导二氯喹啉酸胁迫下水稻的转录因子分析 | 第99-104页 |
| 3 讨论 | 第104-109页 |
| 第六章 水稻二氯喹啉酸胁迫下水杨酸诱导的蛋白组分析 | 第109-132页 |
| 前言 | 第109页 |
| 1 材料与方法 | 第109-114页 |
| 1.1 试验材料和生长条件 | 第109页 |
| 1.2 iTRAQ定量蛋白质组学实验的流程 | 第109-112页 |
| 1.3 iTRAQ定量蛋白质组学信息分析 | 第112-114页 |
| 2 结果与分析 | 第114-128页 |
| 2.1 蛋白质的鉴定 | 第114-118页 |
| 2.2 蛋白质的定量分析 | 第118-123页 |
| 2.3 差异蛋白分析 | 第123-127页 |
| 2.4 转录组与蛋白组的关联分析 | 第127-128页 |
| 3 讨论 | 第128-132页 |
| 第七章 结论与展望 | 第132-135页 |
| 1 研究结论 | 第132-133页 |
| 2 展望 | 第133-135页 |
| 参考文献 | 第135-151页 |
| 附录1. 转录组分析的相关数据 | 第151-154页 |
| 附录2. 转录组和蛋白组的关联分析数据 | 第154页 |
