| 摘要 | 第6-8页 |
| Abstract | 第8-10页 |
| 前言 | 第15-22页 |
| 1 海参资源概述 | 第15-16页 |
| 1.1 海参的分布 | 第15页 |
| 1.2 海参的活性成分及功能 | 第15-16页 |
| 1.3 不同种类海参的功效成分及活性差异 | 第16页 |
| 2 海参多糖概述 | 第16-17页 |
| 2.1 海参硫酸软骨素 | 第16-17页 |
| 2.2 海参岩藻聚糖硫酸酯 | 第17页 |
| 3 化疗药物对黏膜免疫功能的损伤 | 第17-19页 |
| 3.1 黏膜免疫系统 | 第17-18页 |
| 3.2 化疗药物的损伤 | 第18-19页 |
| 4 Toll 样受体及其信号转导通路概况 | 第19-20页 |
| 4.1 Toll 样受体及其配体 | 第19页 |
| 4.2 Toll 样受体信号转导途径 | 第19-20页 |
| 5 研究目的、意义及主要内容 | 第20-22页 |
| 5.1 研究目的及意义 | 第20-21页 |
| 5.2 主要研究内容 | 第21-22页 |
| 第一章 四种常见海参对小鼠肠道黏膜免疫的调节作用 | 第22-32页 |
| 1 引言 | 第22页 |
| 2 材料和试剂 | 第22-24页 |
| 2.1 实验材料 | 第22-23页 |
| 2.2 实验动物 | 第23页 |
| 2.3 实验试剂 | 第23页 |
| 2.4 实验仪器 | 第23-24页 |
| 3 实验方法 | 第24-26页 |
| 3.1 动物实验 | 第24页 |
| 3.2 小肠组织切片制备及 HE 染色[48] | 第24-25页 |
| 3.3 小肠绒毛长度、隐窝深度的测量 | 第25页 |
| 3.4 小肠黏膜的制备 | 第25页 |
| 3.5 Elisa 法检测肠黏膜中 IFN-γ、IL-4 含量 | 第25页 |
| 3.6 小肠黏膜 SIgA 含量的测定 | 第25-26页 |
| 3.7 海参中多糖含量的测定 | 第26页 |
| 3.8 数据统计处理 | 第26页 |
| 4 实验结果与讨论 | 第26-31页 |
| 4.1 海参实验剂量的确定 | 第26-27页 |
| 4.2 海参对小鼠体重及免疫器官指数的影响 | 第27-28页 |
| 4.3 海参对小肠组织形态的影响 | 第28-29页 |
| 4.4 海参对小肠绒毛长度、隐窝深度及 V/C 值的影响 | 第29页 |
| 4.5 海参对小肠黏膜 Th1/Th2 细胞因子平衡的影响 | 第29-30页 |
| 4.6 海参对小肠黏膜 SIgA 含量的影响 | 第30页 |
| 4.7 四种海参的多糖含量比较 | 第30-31页 |
| 5 本章小结 | 第31-32页 |
| 第二章 食用海参对小鼠呼吸道黏膜免疫的调节作用 | 第32-42页 |
| 1 引言 | 第32页 |
| 2 材料和试剂 | 第32-34页 |
| 2.1 实验材料 | 第32页 |
| 2.2 实验动物 | 第32页 |
| 2.3 实验试剂 | 第32-34页 |
| 2.4 实验仪器 | 第34页 |
| 3 实验方法 | 第34-37页 |
| 3.1 海参灌胃剂量确定及样品制备 | 第34-35页 |
| 3.2 动物实验 | 第35页 |
| 3.3 小鼠支气管肺泡冲洗液的制备 | 第35页 |
| 3.4 Western blot 法检测肺组织中溶菌酶的蛋白表达量 | 第35-37页 |
| 3.5 支气管肺泡冲洗液中 SIgA 的测定 | 第37页 |
| 3.6 小鼠肺组织 IgA、pIgR 蛋白表达量的测定 | 第37页 |
| 3.7 数据统计处理 | 第37页 |
| 4 实验结果与讨论 | 第37-41页 |
| 4.1 海参对小鼠免疫器官指数的影响 | 第37-38页 |
| 4.2 海参对小鼠肺组织中溶菌酶表达量的影响 | 第38-39页 |
| 4.3 海参对小鼠呼吸道 SIgA 分泌的影响 | 第39-41页 |
| 5 本章小结 | 第41-42页 |
| 第三章 海参岩藻聚糖硫酸酯及酶解产物对小鼠肠道黏膜免疫的调节作用及机理 | 第42-65页 |
| 第一节 不同分子量海参岩藻聚糖硫酸酯对小鼠肠道黏膜免疫的调节作用 | 第43-53页 |
| 1 引言 | 第43页 |
| 2 材料和试剂 | 第43-45页 |
| 2.1 实验材料 | 第43-44页 |
| 2.2 实验动物 | 第44页 |
| 2.3 实验试剂 | 第44页 |
| 2.4 实验仪器 | 第44-45页 |
| 3 实验方法 | 第45-46页 |
| 3.1 小肠病理学组织切片及 HE 染色 | 第45页 |
| 3.2 小肠绒毛长度、隐窝深度的测量 | 第45页 |
| 3.3 Elisa 法检测肠黏膜中 IFN-γ、IL-4 含量 | 第45页 |
| 3.4 Western blot 法检测小肠 IgA 蛋白表达量 | 第45页 |
| 3.5 PMP-HPLC 法检测小鼠血清中的岩藻糖含量 | 第45-46页 |
| 3.6 数据统计处理 | 第46页 |
| 4 实验结果与讨论 | 第46-52页 |
| 4.1 不同分子量 SC-FUC 对小鼠免疫器官指数的影响 | 第46-47页 |
| 4.2 不同分子量 SC-FUC 对小肠组织形态的影响 | 第47-48页 |
| 4.3 不同分子量 SC-FUC 对小肠绒毛长度、隐窝深度及 V/C 值的影响 | 第48页 |
| 4.4 不同分子量 SC-FUC 对小肠黏膜 Th1/Th2 细胞因子平衡的影响 | 第48-49页 |
| 4.5 不同分子量 SC-FUC 对小肠 IgA 表达量的影响 | 第49-50页 |
| 4.6 不同分子量 SC-FUC 对小鼠肠道黏膜免疫调节作用的差异性研究 | 第50-52页 |
| 5 本节小结 | 第52-53页 |
| 第二节 海参岩藻聚糖硫酸酯促进小肠 IgA 表达量增高的机理 | 第53-65页 |
| 1 引言 | 第53页 |
| 2 材料和试剂 | 第53-55页 |
| 2.1 实验动物 | 第53页 |
| 2.2 实验细胞 | 第53-54页 |
| 2.3 实验试剂 | 第54页 |
| 2.4 实验仪器 | 第54-55页 |
| 3 实验方法 | 第55-58页 |
| 3.1 Real Time-PCR 法检测小肠组织 IL-6，IL-10 的 mRNA 表达量 | 第55-56页 |
| 3.2 小鼠巨噬细胞的培养 | 第56页 |
| 3.3 MTT 法检测巨噬细胞的增殖情况 | 第56页 |
| 3.4 中性红法检测巨噬细胞的吞噬活性 | 第56-57页 |
| 3.5 硝酸还原酶法检测巨噬细胞培养上清液中的 NO 含量 | 第57页 |
| 3.6 SC-FUC 对巨噬细胞 Toll 样受体及其信号分子 mRNA 表达量的影响 | 第57-58页 |
| 3.7 SC-FUC 对巨噬细胞 IL-6，IL-10 mRNA 表达量的影响 | 第58页 |
| 3.8 数据统计处理 | 第58页 |
| 4 实验结果与讨论 | 第58-63页 |
| 4.1 SC-FUC 对小肠 IL-6，IL-10 mRNA 表达量的影响 | 第58-59页 |
| 4.2 SC-FUC 对巨噬细胞增殖的影响 | 第59-60页 |
| 4.3 SC-FUC 对巨噬细胞吞噬能力的影响 | 第60-61页 |
| 4.4 SC-FUC 对巨噬细胞分泌 NO 的影响 | 第61页 |
| 4.5 SC-FUC 对巨噬细胞 Toll 样受体及其信号分子 mRNA 表达量的影响 | 第61-62页 |
| 4.6 SC-FUC 对巨噬细胞 IL-6，IL-10 mRNA 表达量的影响 | 第62-63页 |
| 5 本节小结 | 第63-65页 |
| 结论 | 第65-68页 |
| 1 总结 | 第65-67页 |
| 2 本论文创新点 | 第67-68页 |
| 参考文献 | 第68-75页 |
| 致谢 | 第75-76页 |
| 个人简历 | 第76-77页 |
| 硕士就读期间发表的论文 | 第77-78页 |
