太谷核不育小麦Ms2近等基因系的差异蛋白质组学研究
| 符号说明 | 第4-8页 |
| 摘要 | 第8-9页 |
| Abstract | 第9-10页 |
| 1 前言 | 第11-21页 |
| 1.1. 太谷核不育小麦的发现和鉴定 | 第11页 |
| 1.2 在轮回选择育种上的应用 | 第11-13页 |
| 1.3 种质资源创新 | 第13-15页 |
| 1.3.1 Tal kr ph1b 基因综合体 | 第13页 |
| 1.3.2 矮败小麦 | 第13-15页 |
| 1.3.2.1 蓝粒标记性状的研究 | 第14页 |
| 1.3.2.2 矮败八倍体小黑麦 | 第14-15页 |
| 1.4 杂种优势的利用 | 第15页 |
| 1.5 太谷核不育小麦败育生理生化的研究 | 第15-16页 |
| 1.6 太谷核不育小麦 MS2 基因的定位 | 第16-18页 |
| 1.6.1 现代分子标记技术 | 第16-17页 |
| 1.6.2 连锁图谱筛选分子标记 | 第17页 |
| 1.6.3 比较基因组共享分子标记 | 第17-18页 |
| 1.7 蛋白质组学的研究 | 第18-21页 |
| 1.7.1 作物蛋白质组学 | 第19页 |
| 1.7.2 小麦雄性不育的蛋白组学研究 | 第19-21页 |
| 1.8 研究展望 | 第21页 |
| 2 材料和方法 | 第21-31页 |
| 2.1 供试材料 | 第21页 |
| 2.2 取样方法 | 第21-22页 |
| 2.3 实验试剂及仪器 | 第22-26页 |
| 2.3.1 试剂 | 第22页 |
| 2.3.2 仪器 | 第22-23页 |
| 2.3.3 试剂配制 | 第23-26页 |
| 2.4 实验方法 | 第26-31页 |
| 2.4.1 技术路线 | 第26页 |
| 2.4.2 幼穗全蛋白提取方法-TCA/丙酮法 | 第26页 |
| 2.4.3 蛋白质裂解以及纯化 | 第26-27页 |
| 2.4.4 蛋白溶液浓度测定 | 第27-28页 |
| 2.4.5 SDS-PAGE | 第28页 |
| 2.4.6 双向电泳 | 第28-29页 |
| 2.4.7 胶体染色和 2-DE 图像分析 | 第29-30页 |
| 2.4.8 胶内酶切、质谱鉴定以及数据库比对 | 第30-31页 |
| 3 结果与分析 | 第31-44页 |
| 3.1 SDS-PAGE 结果 | 第31页 |
| 3.2 不同材料相同时期蛋白质表达图谱比较 | 第31-40页 |
| 3.2.1 不同材料减数分裂时期图谱比较 | 第32-35页 |
| 3.2.2 不同材料单核时期电泳图谱比较结果 | 第35-37页 |
| 3.2.3 不同材料二核时期电泳图谱比较结果 | 第37-40页 |
| 3.3 同一材料不同时期的电泳图谱比较 | 第40-44页 |
| 4 讨论 | 第44-47页 |
| 4.1 蛋白样品的提取 | 第44页 |
| 4.2 质谱分析 | 第44-45页 |
| 4.3 雄性不育机理 | 第45-47页 |
| 4.3.1 参与转录翻译的相关蛋白 | 第45-46页 |
| 4.3.2 参与花粉发育相关蛋白 | 第46页 |
| 4.3.3 程序性死亡相关蛋白 | 第46-47页 |
| 4.3.4 其他蛋白 | 第47页 |
| 5 结论 | 第47页 |
| 6 进一步研究设想 | 第47-48页 |
| 参考文献 | 第48-56页 |
| 致谢 | 第56-57页 |
| 攻读学位期间发表论文情况 | 第57页 |
