| 中文摘要 | 第8-10页 |
| Abstract | 第10-11页 |
| 1 前言 | 第13-25页 |
| 1.1 RNA沉默的研究进展 | 第13-17页 |
| 1.1.1 RNA沉默的发现 | 第13页 |
| 1.1.2 RNA沉默途径 | 第13-15页 |
| 1.1.2.1 内源sRNA生成途径 | 第13-14页 |
| 1.1.2.2 外源sRNA生成途径 | 第14-15页 |
| 1.1.3 参与RNA沉默的细胞组分 | 第15-17页 |
| 1.1.3.1 RNA依赖的RNA聚合酶 | 第15页 |
| 1.1.3.2 Dicer蛋白 | 第15-16页 |
| 1.1.3.3 Argonaute蛋白 | 第16-17页 |
| 1.1.4 RNA沉默受植物激素水杨酸影响 | 第17页 |
| 1.2 水杨酸的研究进展 | 第17-21页 |
| 1.2.1 水杨酸的发现 | 第17-18页 |
| 1.2.2 水杨酸的合成途径 | 第18页 |
| 1.2.3 水杨酸增强植物抗病性 | 第18-19页 |
| 1.2.4 NPR1是水杨酸信号中心分子 | 第19-20页 |
| 1.2.5 水杨酸与活性氧的关系 | 第20-21页 |
| 1.2.5.1 氧化迸发介导的水杨酸信号转导 | 第20-21页 |
| 1.2.5.2 水杨酸调节细胞内氧化还原状态 | 第21页 |
| 1.3 活性氧的研究进展 | 第21-22页 |
| 1.3.1 活性氧的产生 | 第21页 |
| 1.3.2 活性氧的清除机制 | 第21-22页 |
| 1.3.3 活性氧在植物抗病反应中的作用 | 第22页 |
| 1.4 类甜蛋白的研究进展 | 第22-24页 |
| 1.4.1 类甜蛋白的发现 | 第22-23页 |
| 1.4.2 类甜蛋白的结构 | 第23页 |
| 1.4.3 类甜蛋白的功能 | 第23-24页 |
| 1.4.4 类甜蛋白的表达模式 | 第24页 |
| 1.5 立题依据与研究意义 | 第24-25页 |
| 2 材料与方法 | 第25-40页 |
| 2.1 试验材料 | 第25-27页 |
| 2.1.1 植物材料 | 第25页 |
| 2.1.2 菌株与质粒 | 第25页 |
| 2.1.3 酶和各种生化试剂 | 第25页 |
| 2.1.4 主要仪器设备 | 第25页 |
| 2.1.5 工具软件与数据库 | 第25-26页 |
| 2.1.6 PCR引物 | 第26-27页 |
| 2.2 试验方法 | 第27-40页 |
| 2.2.1 本生烟的种植与管理 | 第27页 |
| 2.2.2 基因克隆及载体构建 | 第27-31页 |
| 2.2.3 农杆菌介导的叶盘法转化本生烟 | 第31-32页 |
| 2.2.4 组织化学染色 | 第32-33页 |
| 2.2.5 Northernblot检测 | 第33-39页 |
| 2.2.6 农杆菌介导的瞬时侵染 | 第39-40页 |
| 3 结果与分析 | 第40-54页 |
| 3.1 水杨酸增强瞬时侵染介导的RNA沉默 | 第40-41页 |
| 3.2 转录组测序分析筛选水杨酸诱导的沉默增强基因 | 第41-42页 |
| 3.3 NbPR-R是类甜蛋白家族成员 | 第42-46页 |
| 3.4 NbPR-R增强瞬时侵染介导的RNA沉默 | 第46-48页 |
| 3.5 NbPR-R抑制NbCAT表达促进过氧化氢积累 | 第48-50页 |
| 3.6 过氧化氢增强瞬时侵染介导的RNA沉默 | 第50-51页 |
| 3.7 稳定表达体系中NbPR-R功能验证 | 第51-54页 |
| 3.7.1 转基因本生烟NbPR-R及NbPR-Ri株系的获得 | 第51-52页 |
| 3.7.2 转基因本生烟沉默途径相关基因表达水平检测 | 第52-54页 |
| 4 讨论 | 第54-58页 |
| 5 结论 | 第58-59页 |
| 参考文献 | 第59-65页 |
| 攻读学位期间发表的论文及成果 | 第65-66页 |
| 致谢 | 第66页 |
