| 中文摘要 | 第6-7页 |
| Abstract | 第7-8页 |
| 第一部分 文献综述 | 第9-22页 |
| 1.植物光合作用研究进展 | 第9-12页 |
| 1.1 C_3植物的光合过程 | 第10页 |
| 1.2 C_4植物的光合研究 | 第10-12页 |
| 1.2.1 C_4植物三条脱羧途径 | 第10-11页 |
| 1.2.2 C_4植物主要光合优势 | 第11-12页 |
| 2.猪毛菜属的结构和生理学分析 | 第12-14页 |
| 2.1 猪毛菜C_3型,中间型,C_4型光合作用之间的过渡 | 第13页 |
| 2.2 猪毛菜属的分布和生理作用 | 第13-14页 |
| 3.植物组织培养的技术 | 第14-15页 |
| 4.水稻是重要的粮食作物 | 第15-17页 |
| 4.1 气孔是水分和CO_2气体交换的重要通道 | 第15-16页 |
| 4.2 离子和有机物对气孔运动的影响 | 第16页 |
| 4.3 植物CA介导下的二氧化碳调控气孔运动相应机制 | 第16-17页 |
| 5.植物碳酸酐酶的研究现状 | 第17-20页 |
| 5.1 C_3与C_4植物中碳酸酐酶的异同 | 第17-18页 |
| 5.2 碳酸酐酶的类型 | 第18-19页 |
| 5.3 拟南芥βCA6的相关研究 | 第19-20页 |
| 6.植物启动子研究 | 第20-22页 |
| 6.1 启动子种类 | 第20-21页 |
| 6.2 GbSLSP组织特异性启动子研究 | 第21-22页 |
| 第二部分 实验论文 | 第22-59页 |
| 第一章 猪毛菜愈伤组织诱导 | 第22-36页 |
| 1.实验材料 | 第22-23页 |
| 1.1 植物材料 | 第22页 |
| 1.2 化学试剂 | 第22页 |
| 1.3 仪器设备 | 第22页 |
| 1.4 常用培养基 | 第22-23页 |
| 2.实验方法 | 第23-30页 |
| 2.1 猪毛菜无菌苗的培养 | 第23页 |
| 2.2 猪毛菜愈伤组织的诱导 | 第23-25页 |
| 2.2.1 不同条件组合诱导愈伤组织 | 第23页 |
| 2.2.2 不同的激素组合诱导愈伤 | 第23-25页 |
| 2.3 猪毛菜愈伤组织的分化 | 第25-30页 |
| 2.3.1 不同的激素组合诱导愈伤组织的分化 | 第25-30页 |
| 3.实验结果 | 第30-36页 |
| 3.1 猪毛菜愈伤组织的诱导 | 第30-33页 |
| 3.1.1 不同培养基诱导愈伤组织的情况 | 第30页 |
| 3.1.2 不同的外植体诱导愈伤组织的情况 | 第30-31页 |
| 3.1.3 多种激素组合对形成愈伤的情况 | 第31-33页 |
| 3.2 猪毛菜愈伤组织的分化 | 第33-36页 |
| 3.2.1 多种激素配比对愈伤分化的影响 | 第33-36页 |
| 第二章 过量表达ATβCA6的转基因水稻及GbSLSP启动子在水稻中的研究 | 第36-59页 |
| 1.实验材料 | 第36-40页 |
| 1.1 植物材料 | 第36页 |
| 1.2 菌种及载体 | 第36页 |
| 1.3 化学试剂 | 第36页 |
| 1.4 实验仪器 | 第36页 |
| 1.5 培养基及试剂的配制 | 第36-40页 |
| 1.5.1 试剂的配制 | 第38-40页 |
| 1.5.2 引物序列 | 第40页 |
| 2.实验方法 | 第40-49页 |
| 2.1 2×CTAB微量法提取DNA | 第40-41页 |
| 2.2 Biozol法提取水稻总RNA(小量法) | 第41页 |
| 2.3 RNA质量检测 | 第41-42页 |
| 2.4 反转录PCR | 第42页 |
| 2.5 半定量RT-PCR | 第42-43页 |
| 2.6 碱裂解法提取质粒 | 第43页 |
| 2.7 双酶切载体和PCR产物 | 第43-44页 |
| 2.8 载体和目的条带的连接 | 第44页 |
| 2.9 农杆菌感受态的制备及转化 | 第44-45页 |
| 2.10 E.coli感受态的制备及转化 | 第45页 |
| 2.11 菌种保存 | 第45页 |
| 2.12 GUS染色的方法 | 第45-46页 |
| 2.13 水稻愈伤的诱导 | 第46页 |
| 2.14 水稻转化 | 第46-47页 |
| 2.15 植物干鲜重的测定 | 第47页 |
| 2.16 植物叶片净光合速率的测量 | 第47-48页 |
| 2.17 植物叶片气孔导度、胞间CO_2浓度和蒸腾速率的测定 | 第48页 |
| 2.18 植物叶片呼吸速率的测量 | 第48页 |
| 2.19 植物植株高度的测量 | 第48页 |
| 2.20 植株叶绿素的测定 | 第48-49页 |
| 3.实验结果 | 第49-59页 |
| 3.1 水稻保卫细胞特异性启动子的研究 | 第49-52页 |
| 3.1.1 GbSLSP启动子表达载体的构建 | 第49-50页 |
| 3.1.2 转基因植株的获取和鉴定 | 第50-51页 |
| 3.1.3 GUS染色的结果 | 第51-52页 |
| 3.2 βCA6在水稻中的功能研究 | 第52-59页 |
| 3.2.1 T_1代的筛选与鉴定 | 第52-53页 |
| 3.2.2 转基因株系的鉴定和转基因株系βCA6表达检测 | 第53-54页 |
| 3.2.3 βCA6转基因水稻生理指标测量 | 第54-59页 |
| 讨论 | 第59-61页 |
| 参考文献 | 第61-68页 |
| 附录1 | 第68-69页 |
| 附录2 | 第69-70页 |
| 致谢 | 第70页 |
