| 摘要 | 第4-5页 |
| ABSTRACT | 第5-6页 |
| 第1章 绪论 | 第10-22页 |
| 1.1 课题的研究背景及目的意义 | 第10页 |
| 1.2 纳豆激酶的研究及进展 | 第10-16页 |
| 1.2.1 纳豆激酶的来源—纳豆 | 第10-11页 |
| 1.2.2 纳豆激酶性质 | 第11-12页 |
| 1.2.3 纳豆激酶的作用机理 | 第12页 |
| 1.2.4 纳豆激酶的应用 | 第12-13页 |
| 1.2.5 纳豆激酶酶活的测定方法 | 第13-14页 |
| 1.2.6 纳豆激酶的研究现状 | 第14-16页 |
| 1.3 微胶囊的研究及进展 | 第16-20页 |
| 1.3.1 微胶囊的定义及发展 | 第16页 |
| 1.3.2 微胶囊的目的和意义 | 第16-17页 |
| 1.3.3 微胶囊的壁材 | 第17-18页 |
| 1.3.4 微胶囊的方法 | 第18-19页 |
| 1.3.5 微胶囊的研究现状 | 第19-20页 |
| 1.4 本课题的主要研究内容 | 第20-22页 |
| 1.4.1 技术路线 | 第20页 |
| 1.4.2 纳豆激酶的酶学特性的研究 | 第20-21页 |
| 1.4.3 海藻酸钠/CMC包埋纳豆激酶的研究 | 第21-22页 |
| 第2章 材料与方法 | 第22-32页 |
| 2.1 实验材料及仪器 | 第22-24页 |
| 2.1.1 实验试剂 | 第22-23页 |
| 2.1.2 实验设备 | 第23-24页 |
| 2.2 实验方法 | 第24-31页 |
| 2.2.1 纳豆激酶的酶学特性研究 | 第24-25页 |
| 2.2.2 纳豆激酶的酶学特性 | 第25-28页 |
| 2.2.3 海藻酸钠/CMC包埋纳豆激酶的研究 | 第28-29页 |
| 2.2.4 海藻酸钠/CMC包埋物的稳定性研究 | 第29-30页 |
| 2.2.5 混合多糖包埋纳豆激酶的比较 | 第30-31页 |
| 2.3 数据分析 | 第31-32页 |
| 第3章 纳豆激酶的酶学特性研究 | 第32-43页 |
| 3.1 纳豆激酶的基础性质研究 | 第32-35页 |
| 3.1.1 纳豆激酶的分子量 | 第32-33页 |
| 3.1.2 纳豆激酶的等电点 | 第33-34页 |
| 3.1.3 纳豆激酶的酶活 | 第34-35页 |
| 3.2 纳豆激酶的酶学特性 | 第35-41页 |
| 3.2.1 纳豆激酶的最适反应温度 | 第35-37页 |
| 3.2.2 纳豆激酶的最适反应pH | 第37-38页 |
| 3.2.3 纳豆激酶的保温时间稳定性 | 第38-39页 |
| 3.2.4 NaCl浓度对纳豆激酶酶活稳定性的影响 | 第39-40页 |
| 3.2.5 金属离子对纳豆激酶酶活稳定性的影响 | 第40-41页 |
| 3.3 本章小结 | 第41-43页 |
| 第4章 海藻酸钠/CMC包埋纳豆激酶的研究 | 第43-62页 |
| 4.1 BCA试剂盒测定蛋白含量的标准曲线 | 第43-44页 |
| 4.2 海藻酸钠/CMC包埋纳豆激酶的单因素实验 | 第44-51页 |
| 4.2.1 海藻酸钠浓度对包埋纳豆激酶的影响 | 第44-47页 |
| 4.2.2 羧甲基纤维素钠浓度对包埋纳豆激酶的影响 | 第47-49页 |
| 4.2.3 CaCl2 浓度对包埋纳豆激酶的影响 | 第49-51页 |
| 4.3 海藻酸钠/CMC包埋纳豆激酶的正交实验 | 第51-54页 |
| 4.3.1 正交实验因素及实验结果 | 第51-53页 |
| 4.3.2 正交实验结果的极差分析 | 第53-54页 |
| 4.4 海藻酸钠/CMC包埋物稳定性研究 | 第54-57页 |
| 4.4.1 温度对海藻酸钠/CMC包埋物稳定性的影响 | 第54-55页 |
| 4.4.2 pH对海藻酸钠/CMC包埋物稳定性的影响 | 第55-56页 |
| 4.4.3 海藻酸钠/CMC包埋物的储存稳定性 | 第56-57页 |
| 4.5 混合多糖制备纳豆激酶微胶囊的比较 | 第57-60页 |
| 4.5.1 混合多糖包埋纳豆激酶的颗粒大小比较 | 第57-58页 |
| 4.5.2 混合多糖包埋纳豆激酶的形态的观察 | 第58-60页 |
| 4.5.3 混合多糖包埋纳豆激酶的酶活大小的比较 | 第60页 |
| 4.6 本章小结 | 第60-62页 |
| 结论 | 第62-63页 |
| 参考文献 | 第63-70页 |
| 攻读硕士期间发表的学术论文 | 第70-72页 |
| 致谢 | 第72页 |
