首页--农业科学论文--水产、渔业论文--水产基础科学论文--水产生物学论文--水产动物学论文

赤眼鳟和草鱼TLR22的结构差异及应对GCRV感染的表达特性

摘要第4-6页
Abstract第6-7页
第一章 文献综述第14-32页
    1 鱼类TLRs的研究现状第15-23页
        1.1 TLRs的结构特性第15-16页
        1.2 鱼类TLRs及其识别配体第16-17页
        1.3 TLRs分类第17-21页
        1.4 TLRs信号传递通路第21-23页
    2 TLR22研究进展第23-27页
        2.1 TLR22的研究现状第23页
        2.2 TLR22的结构特征第23-24页
        2.3 TLR22的分布特征第24页
        2.4 TLR22的细胞亚定位及配体识别差异第24-25页
        2.5 TLR22在先天性免疫反应中的调控作用第25-27页
    3 草鱼抗GCRV品种选育第27-29页
        3.1 杂交育种第27-28页
        3.2 细胞工程育种第28页
        3.3 基因工程育种第28-29页
    4 赤眼鳟和草鱼应对GCRV感染的差异第29-30页
    5 研究的目的及意义第30-32页
第二章 赤眼鳟TLR22基因的克隆及表达特性分析第32-50页
    1 材料方法第32-38页
        1.1 试验鱼和草鱼TLR22序列获得第32-33页
        1.2 总RNA提取第33-34页
        1.3 第一链cDNA合成第34页
        1.4 ScTLR22基因cDNA全长克隆第34-37页
        1.5 ScTLR22序列生物信息学分析第37-38页
        1.6 ScTLR22的组织表达特性分析第38页
        1.7 GCRV感染后TLR22在赤眼鳟和草鱼免疫组织表达水平研究第38页
    2 结果与分析第38-47页
        2.1 ScTLR22基因序列分析第38-39页
        2.2 ScTLR22相似性分析第39-42页
        2.3 系统发育树构建第42页
        2.4 赤眼鳟TLR223D同源建模第42-43页
        2.5 结构域预测分析第43-44页
        2.6 TIR结构域氨基酸序列比对分析第44-45页
        2.7 赤眼鳟TLR22的组织表达特性第45-46页
        2.8 GCRV感染后TLR22在赤眼鳟和草鱼免疫组织表达水平研究第46-47页
    3 讨论第47-49页
    4 小结第49-50页
第三章 赤眼鳟MyD88基因cDNA克隆与表达特性研究第50-62页
    1 材料与方法第51-55页
        1.1 试验鱼及GCRV病毒获取第51页
        1.2 总RNA提取及cDNA合成第51页
        1.3 ScMyD88基因cDNA全长克隆第51-52页
        1.4 ScMyD88序列生物信息学分析第52-53页
        1.5 ScMyD88的组织表达特性分析第53页
        1.6 GCRV感染后MyD88在赤眼鳟免疫组织表达水平研究第53-55页
    2 结果第55-59页
        2.1 赤眼鳟MyD88序列分析第55-56页
        2.2 多序列比对与系统发育树分析第56-58页
        2.3 MyD88在赤眼鳟不同组织的表达第58页
        2.4 GCRV感染后MyD88在赤眼鳟免疫组织的表达水平变化第58-59页
    3 讨论第59-61页
    4 小结第61-62页
第四章 赤眼鳟IRF3基因cDNA克隆及其抗病毒效应分析第62-77页
    1 材料方法第62-68页
        1.1 材料第62页
        1.2 总RNA提取第62页
        1.3 第一链cDNA合成第62页
        1.4 ScIRF3基因cDNA全长克隆第62-63页
        1.5 ScIRF3序列生物信息学分析第63-64页
        1.6 ScIRF3的组织表达特性分析第64-65页
        1.7 GCRV感染后IRF3和IFN-β在赤眼鳟肠和脾中表达水平研究第65页
        1.8 cDNA真核表达质粒构建第65-66页
        1.9 质粒转化及阳性筛选第66-67页
        1.10 细胞转染及阳性细胞筛选第67页
        1.11 GCRV刺激后CIK细胞中IRF3和IFN-β的表达变化第67页
        1.12 GCRV病毒TCID50测定第67-68页
        1.13 数据分析第68页
    2 结果与分析第68-74页
        2.1 ScIRF3基因序列分析第68-70页
        2.2 系统发育树分析和3D结构分析第70-71页
        2.3 ScIRF3组织表达特性研究第71-72页
        2.4 GCRV刺激后赤眼鳟脾脏和肠中IRF3和IFN的表达水平变化第72-73页
        2.5 IRF3细胞亚定位研究第73页
        2.6 CIK细胞过表达ScIRF3的抑病毒效果第73-74页
    3 讨论第74-76页
    4 小结第76-77页
第五章 赤眼鳟和草鱼TLR22识别poly(I:C)模式探讨第77-89页
    1 材料方法第78-79页
        1.1 多序列比对和结构域预测第78页
        1.2 三维模型构建及评价第78页
        1.3 配体分子三维模型获得第78页
        1.4 AutoDock分子对接第78-79页
    2 结果与分析第79-87页
        2.1 赤眼鳟和草鱼TLR22理化性质比较第79页
        2.2 结构域比较第79-80页
        2.3 同源建模结果第80-83页
        2.4 AutoDock分子对接第83-87页
    3 讨论第87-88页
    4 小结第88-89页
第六章 赤眼鳟和草鱼TLR22诱导抗病毒因子表达能力比较第89-97页
    1 材料方法第89-93页
        1.1 材料第89页
        1.2 cDNA真核表达质粒构建第89-92页
        1.3 质粒转化及阳性筛选第92页
        1.4 细胞转染及阳性细胞筛选第92页
        1.5 GCRV刺激后CIK细胞中抗病毒因子的表达变化第92页
        1.6 GCRV病毒TCID50测定第92页
        1.7 数据分析第92-93页
    2 结果与分析第93-95页
        2.1 真核表达质粒构建第93页
        2.2 过表达TLR22的抗病毒效应第93-95页
    3 讨论第95-96页
    4 小结第96-97页
研究总结、创新点及研究展望第97-99页
    1 结论第97页
    2 创新点第97页
    3 研究展望第97-99页
参考文献第99-116页
致谢第116-118页
作者介绍第118-120页
附录 本文所用缩略词详细信息第120-121页

论文共121页,点击 下载论文
上一篇:PCV2 Cap蛋白羧基端氨基酸残基的功能性研究
下一篇:基于同位素标记L-酪氨酸研究博落回中血根碱生源合成途径