| 摘要 | 第4-6页 |
| Abstract | 第6页 |
| 第1章 绪论 | 第12-20页 |
| 1.1 课题来源 | 第12页 |
| 1.2 研究目的及意义 | 第12页 |
| 1.3 PCR 技术背景及国内外研究现状 | 第12-18页 |
| 1.3.1 PCR 技术的发明 | 第12-13页 |
| 1.3.2 PCR 反应的基本组成 | 第13-14页 |
| 1.3.3 PCR 技术的改进 | 第14-18页 |
| 1.4 本课题研究的主要内容 | 第18-20页 |
| 第2章 实验材料与方法 | 第20-38页 |
| 2.1 实验材料与实验设备 | 第20-22页 |
| 2.1.1 实验材料 | 第20-21页 |
| 2.1.2 主要实验设备 | 第21页 |
| 2.1.3 实验材料的制备 | 第21-22页 |
| 2.2 实验方法 | 第22-24页 |
| 2.2.1 课题所需引物的设计与合成 | 第22-23页 |
| 2.2.2 PCR 产物的检测方法 | 第23-24页 |
| 2.3 相关引物的 PCR 模型的确立 | 第24-30页 |
| 2.3.1 280bp 产物最佳反应条件的确立 | 第24-27页 |
| 2.3.2 100bp 产物最佳反应条件的建立 | 第27-28页 |
| 2.3.3 CdTe 量子点的最适反应浓度的测定 | 第28-30页 |
| 2.4 普通 PCR 实验模型的建立 | 第30-32页 |
| 2.4.1 最佳浓度 CdTe 量子点对普通 PCR 产量影响模型的确立 | 第30-31页 |
| 2.4.2 最佳浓度 CdTe 量子点对普通 PCR 灵敏度影响模型的确立 | 第31-32页 |
| 2.4.3 最佳浓度 CdTe 量子点对普通 PCR 稳定性影响模型建立 | 第32页 |
| 2.4.4 不同 CdTe 量子点对普通 PCR 产量影响模型建立 | 第32页 |
| 2.4.5 不同 CdTe 量子点对普通 PCR 退火温度影响模型建立 | 第32页 |
| 2.5 CdTe 量子点对 Q-PCR 影响的模型的建立 | 第32-37页 |
| 2.5.1 最佳浓度 CdTe 量子点对 Q-PCR 产量模型的建立 | 第32-33页 |
| 2.5.2 最佳浓度 CdTe 量子点对 Q-PCR 影响灵敏度模型的建立 | 第33-34页 |
| 2.5.3 CdTe 量子点对 Q-PCR 特异性影响的模型的建立 | 第34页 |
| 2.5.4 不同浓度的 CdTe 量子点对 Q-PCR 的影响的模型的建立 | 第34-35页 |
| 2.5.5 不同 CdTe 量子点对 Q-PCR 产量影响模型的建立 | 第35页 |
| 2.5.6 不同 CdTe 量子点对 Q-PCR 灵敏度影响模型的建立 | 第35-36页 |
| 2.5.7 CdTe 量子点在 Q-PCR 中稳定性实验的模型的建立 | 第36-37页 |
| 2.6 本章小结 | 第37-38页 |
| 第3章 CdTe 量子点对普通 PCR 的影响 | 第38-45页 |
| 3.1 CdTe 量子点对普通 PCR 产量的影响 | 第38-39页 |
| 3.1.1 实验结果与分析 | 第38-39页 |
| 3.1.2 讨论 | 第39页 |
| 3.2 CdTe 量子点对普通 PCR 灵敏度影响的实验结果 | 第39-40页 |
| 3.2.1 实验结果与分析 | 第39-40页 |
| 3.2.2 讨论 | 第40页 |
| 3.3 最佳浓度 CdTe 量子点对普通 PCR 稳定性的影响 | 第40-41页 |
| 3.3.1 实验结果与分析 | 第40-41页 |
| 3.3.2 讨论 | 第41页 |
| 3.4 不同的 CdTe 量子点对 PCR 产量的影响 | 第41-43页 |
| 3.4.1 实验结果与分析 | 第41-42页 |
| 3.4.2 讨论 | 第42-43页 |
| 3.5 不同 CdTe 量子点对普通 PCR 退火温度的影响 | 第43页 |
| 3.5.1 实验结果与分析 | 第43页 |
| 3.5.2 讨论 | 第43页 |
| 3.6 本章小结 | 第43-45页 |
| 第4章 CdTe 量子点对 Q-PCR 的影响 | 第45-60页 |
| 4.1 最佳浓度 CdTe 量子点对 Q-PCR 产量的影响 | 第45-47页 |
| 4.1.1 实验结果与分析 | 第45-46页 |
| 4.1.2 讨论 | 第46-47页 |
| 4.2 最佳浓度 CdTe 量子点对 Q-PCR 灵敏度的影响 | 第47-48页 |
| 4.2.1 实验结果与分析 | 第47-48页 |
| 4.2.2 讨论 | 第48页 |
| 4.3 最佳浓度 CdTe 量子点对 Q-PCR 特异性的影响 | 第48-49页 |
| 4.3.1 实验结果与分析 | 第48-49页 |
| 4.3.2 讨论 | 第49页 |
| 4.4 不同浓度 CdTe 量子点对 Q-PCR 的影响 | 第49-54页 |
| 4.4.1 EvaGreen 染料体系里的实验结果 | 第49-52页 |
| 4.4.2 SYBR GreenI 染料体系里的实验结果 | 第52-54页 |
| 4.4.3 讨论 | 第54页 |
| 4.5 两种不同 CdTe 量子点对 Q-PCR 产量的影响 | 第54-55页 |
| 4.5.1 实验结果与分析 | 第54-55页 |
| 4.5.2 讨论 | 第55页 |
| 4.6 不同 CdTe 量子点对 Q-PCR 灵敏度影响实验 | 第55-56页 |
| 4.6.1 实验结果与分析 | 第55-56页 |
| 4.6.2 讨论 | 第56页 |
| 4.7 CdTe 量子点在 Q-PCR 中稳定性实验模型的建立 | 第56-58页 |
| 4.7.1 同一批次 Q-PCR 重现性实验结果 | 第56-57页 |
| 4.7.2 不同批次模板为人类基因组重复性实验结果 | 第57-58页 |
| 4.7.3 不同批次模板为λDNA 基因组重复性实验结果 | 第58页 |
| 4.7.4 讨论 | 第58页 |
| 4.8 本章小结 | 第58-60页 |
| 第5章 CdTe 量子点对 DNA 复制忠实性的影响 | 第60-67页 |
| 5.1 体内测试 | 第60-62页 |
| 5.1.1 实验材料与方法 | 第60-61页 |
| 5.1.2 实验结果与分析 | 第61-62页 |
| 5.1.3 讨论 | 第62页 |
| 5.2 体外测试 | 第62-65页 |
| 5.2.1 实验材料与实验方法 | 第62-63页 |
| 5.2.2 实验结果与分析 | 第63-64页 |
| 5.2.3 讨论 | 第64-65页 |
| 5.3 DNA 测序 | 第65-66页 |
| 5.3.1 实验的材料与方法 | 第65页 |
| 5.3.2 实验结果与分析 | 第65-66页 |
| 5.4 本章小结 | 第66-67页 |
| 结论 | 第67-69页 |
| 参考文献 | 第69-74页 |
| 攻读硕士学位期间发表的论文及其它成果 | 第74-76页 |
| 致谢 | 第76页 |
