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壳聚糖酶OU01底物结合与催化机理研究

摘要第5-7页
Abstract第7-10页
第一章 文献综述第16-36页
    1 壳寡糖概述第16-19页
        1.1 壳寡糖的来源及功能第16-18页
        1.2 壳寡糖的制备第18-19页
    2 壳聚糖酶概述第19-23页
        2.1 壳聚糖酶的来源第19-20页
        2.2 壳聚糖酶的分类第20-21页
        2.3 壳聚糖酶基因的获得及体外异源表达系统构建第21-22页
        2.4 壳聚糖酶的性质第22页
        2.5 壳聚糖巧的生物学功能及应用第22-23页
    3 蛋白质X-射线晶体学概述第23-29页
        3.1 蛋白质结构的测定方法第23-24页
        3.2 蛋白质X-射线晶体学概述第24-29页
    4 壳聚糖酶的三维空间结构简介第29-30页
    5 GH46壳聚糖酶研究现状第30-35页
        5.1 壳聚糖酶的催化机理第31-32页
        5.2 壳聚糖酶水解过程及产物分析第32-33页
        5.3 壳聚糖酶中与催化相关的氨基酸功能研究第33-35页
    6 选题背景和研究意义第35-36页
第二章 Chitosanase OU01在大肠杆菌中的重组表达及酶的分离纯化第36-52页
    第一节 Chitosanse OU01基因克隆及表达载体的构建第36-46页
        1 材料与试剂第36-37页
            1.1 菌株与质粒第36-37页
            1.2 试剂第37页
        2 实验方法第37-42页
            2.1 细菌基因组提取第37-38页
            2.2 引物设计第38-39页
            2.3 PCR扩增及产物回收第39-40页
            2.4 目的片段及表达载体的双酶切处理第40页
            2.5 目的片段与表达载体连接第40-41页
            2.6 转化E.coli DH5α感受态细胞第41页
            2.7 表达菌株的构建第41-42页
        3 实验结果第42-45页
            3.1 Chitosanse OU01基因的克隆第42-43页
            3.2 目的基因与表达载体双酶切结果第43-44页
            3.3 重组表达菌株的构建第44-45页
        4 讨论第45页
        5 小结第45-46页
    第二节 Chitosanse OU01在大肠杆菌中的表达及重组蛋白的分离纯化第46-52页
        1 材料试剂与主要仪器设备第46页
        2 实验方法第46-48页
            2.1 重组蛋白的诱导表达第46-47页
            2.2 菌体破碎第47页
            2.3 亲和层析及柱上酶切第47页
            2.4 凝胶过滤层析第47-48页
        3 实验结果第48-50页
            3.1 重组蛋白的表达第48页
            3.2 亲和层析及柱上酶切对chitosanase OU01的纯化第48页
            3.3 凝胶过滤层析纯化结果第48-50页
        4 讨论第50-51页
        5 小结第51-52页
第三章 Chitosanase OU01动力学参数测定、酶解产物及酶动力学分析第52-62页
    1 实验试剂与主要仪器第52-53页
    2 实验方法第53-55页
        2.1 DNS标准曲线的制作第53页
        2.2 蛋白质浓度的测定第53-54页
        2.3 壳聚糖酶活力的测定第54页
        2.4 Chitosanase OU01动力学常数的测定第54页
        2.5 Chitosanase OU01水解产物分析第54-55页
        2.6 Chitosanase OU01水解动力学研究第55页
    3 实验结果第55-59页
        3.1 Chitosanase OU01的米氏常数第55-56页
        3.2 水解产物的质谱分析第56-57页
        3.3 水解产物的TLC分析结果第57-58页
        3.4 不同时间点水解样品的NMR分析第58-59页
        3.5 水解曲线第59页
    4 讨论第59-61页
    5 小结第61-62页
第四章 Chitosanase OU01-(GlcN)_6复合物晶体的培养与结构解析第62-78页
    1 实验试剂与主要仪器第62页
    2 实验方法第62-66页
        2.1 催化关键氨基酸的确定第62-63页
        2.2 关键氨基酸的定点突变第63-64页
        2.3 突变体蛋白的表达与分离纯化第64页
        2.4 突变体E25A与D43A活性测定第64页
        2.5 酶与底物复合物晶体的生长与筛选第64-65页
        2.6 晶体数据的收集第65-66页
        2.7 晶体结构解析第66页
    3 实验结果第66-75页
        3.1 催化关键氨基酸的确定第66-67页
        3.2 氨基酸定点突变第67页
        3.3 突变体活性第67页
        3.4 酶与底物复合物的形成第67-68页
        3.5 晶体生长条件筛选第68页
        3.6 复合物晶体衍射数据收集及结构解析第68-71页
        3.7 复合物晶体的整体结构描述第71-73页
        3.8 六糖底物的电子密度图第73-74页
        3.9 Chitosanase OU01空间结构比较第74-75页
    4 讨论第75-77页
    5 小结第77-78页
第五章 基于复合物结构的底物结合特异性及催化机理研究第78-103页
    第一节 Chitosanase OU01结合口袋内部酶与底物的相互作用分析第78-87页
        1 实验试剂与主要仪器第78页
        2 实验方法第78-81页
            2.1 结合口袋内酶与底物相互作用分析第78页
            2.2 突变体的制备第78-79页
            2.3 酶活性测定第79页
            2.4 酶的热稳定性实验第79-81页
        3 实验结果第81-85页
            3.1 结合口袋内部酶与底物形成的相互作用第81-83页
            3.2 突变体活性测定第83页
            3.3 各个突变体蛋白质构象的变化研究(DSF)第83-85页
        4 讨论第85-86页
        5 小结第86-87页
    第二节 Chitosanase OU01的催化机理研究第87-92页
        1 实验方法第87页
        2 实验结果第87-89页
            2.1 E25A复合物结构中催化关键作用的分析第87-88页
            2.2 D43A复合物结构中催化关键作用的分析第88-89页
        3 讨论第89-91页
        4 小结第91-92页
    第三节 Chitosanase OU01酶切位点底物结合特异性分析第92-103页
        1 实验试剂第92页
        2 实验方法第92-94页
            2.1 水解DDA=50%壳聚糖第92页
            2.2 水解产物的质谱分析第92-93页
            2.3 水解产物的甲基化处理第93页
            2.4 二级质谱分析第93页
            2.5 分子对接第93-94页
        3 实验结果第94-98页
            3.1 水解DDA=50%壳聚糖第94页
            3.2 水解产物质谱分析第94-95页
            3.3 水解产物的甲基化及质谱分析第95页
            3.4 水解产物的结构分析第95-97页
            3.5 分子对接第97-98页
        4 讨论第98-102页
        5 小结第102-103页
第六章 壳聚糖酶与底物复合物的形成机理第103-119页
    1 实验方法第103-105页
        1.1 结合口袋外部底物结合位点预测第103页
        1.2 预测氨基酸功能的验证第103-104页
        1.3 突变体D40A的酶热稳定分析第104页
        1.4 小分子底物的制备及组分鉴定第104页
        1.5 突变体对小分子底物的活性测定第104-105页
        1.6 由底物结合引起的酶构象变化分析第105页
    2 实验结果第105-112页
        2.1 复合物结构表面电荷分析及底物结合位点预测第105-106页
        2.2 预测氨基酸突变体的相对酶活性第106-107页
        2.3 突变体D40A热稳定性分析第107页
        2.4 小分子底物的制备第107-108页
        2.5 突变体对小分子底物的相对活性第108-109页
        2.6 底物结合引起的酶构象变化分析第109-112页
    3 讨论第112-118页
    4 小结第118-119页
全文总结第119-121页
论文创新点第121页
论文不足及下一步研究计划第121-122页
参考文献第122-131页
致谢第131-132页
个人简历第132-133页
发表的学术论文第133页

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