| 摘要 | 第7-9页 |
| Abstract | 第9-10页 |
| 第一章 绪论 | 第11-28页 |
| 1、硒与癌症 | 第11-18页 |
| 1.1 硒元素概述 | 第11-12页 |
| 1.2 硒化氢简介 | 第12-14页 |
| 1.2.1 硒化氢物理化学性质 | 第12-14页 |
| 1.2.2 硒化氢测定方法 | 第14页 |
| 1.3 亚硒酸钠抗癌机制研究进展 | 第14-18页 |
| 2、乏氧与癌症 | 第18-19页 |
| 3、荧光探针简介 | 第19页 |
| 4、多组分检测研究现状 | 第19-22页 |
| 5、论文的选题背景、意义及实验思路 | 第22-24页 |
| 参考文献 | 第24-28页 |
| 第二章 细胞内H_2Se近红外荧光探针的设计合成及生物成像 | 第28-59页 |
| 1、引言 | 第28-29页 |
| 2、实验部分 | 第29-41页 |
| 2.1 仪器与试剂 | 第29-31页 |
| 2.2 探针NIR-H_2Se的合成路线 | 第31页 |
| 2.3 探针NIR-H_2Se的合成与表征 | 第31-33页 |
| 2.3.1 化合物1的合成与表征 | 第31-32页 |
| 2.3.2 化合物2的合成与表征 | 第32页 |
| 2.3.3 探针NIR-H_2Se的合成与表征 | 第32-33页 |
| 2.4 探针NIR-H_2Se及其反应产物荧光量子产率（Φ）的测定 | 第33-34页 |
| 2.5 探针NIR-H_2Se的化学体系分析 | 第34-37页 |
| 2.5.1 探针NIR-H_2Se和待测物H_2Se储备液的配制方法 | 第34页 |
| 2.5.2 探针NIR-H_2Se与H_2Se反应机理的验证 | 第34-35页 |
| 2.5.2.1 高分辨质谱验证 | 第35页 |
| 2.5.2.2 高效液相色谱验证 | 第35页 |
| 2.5.3 探针NIR-H_2Se反应产物的光谱性质 | 第35页 |
| 2.5.4 缓冲溶液pH值对探针NIR-H_2Se响应的影响 | 第35-36页 |
| 2.5.5 探针NIR-H_2Se响应浓度的优化 | 第36页 |
| 2.5.6 探针NIR-H_2Se和待测物H_2Se的响应 | 第36页 |
| 2.5.7 探针NIR-H_2Se选择性的测定 | 第36-37页 |
| 2.5.8 探针NIR-H_2Se反应动力学 | 第37页 |
| 2.6 探针NIR-H_2Se的生物体系分析 | 第37-39页 |
| 2.6.1 细胞培养 | 第37页 |
| 2.6.2 抗光漂白实验 | 第37-38页 |
| 2.6.3 细胞毒性评价实验（MTT） | 第38-39页 |
| 2.6.4 线粒体定位实验 | 第39页 |
| 2.7 常氧、乏氧条件下Na_2SeO_3诱导肿瘤细胞凋亡过程中H_2Se浓度的检测 | 第39-40页 |
| 2.7.1 不同浓度的Na_2SeO_3孵育细胞相同时间 | 第39-40页 |
| 2.7.2 相同浓度的Na_2SeO_3孵育细胞不同时间 | 第40页 |
| 2.8 常氧、乏氧条件下Na_2SeO_3诱导肿瘤细胞凋亡过程中H_2O2浓度的检测 | 第40-41页 |
| 2.8.1 不同浓度的Na_2SeO_3孵育细胞相同时间 | 第40页 |
| 2.8.2 相同浓度的Na_2SeO_3孵育细胞不同时间 | 第40-41页 |
| 2.9 探针NIR-H_2Se活体成像 | 第41页 |
| 3、结果与讨论 | 第41-56页 |
| 3.1 探针NIR-H_2Se与H_2Se反应产物的验证 | 第41-43页 |
| 3.2 探针NIR-H_2Se反应产物的光谱性质 | 第43页 |
| 3.3 缓冲溶液的pH值对探针NIR-H_2Se和H_2Se响应的影响 | 第43-44页 |
| 3.4 探针NIR-H_2Se响应浓度的优化 | 第44-45页 |
| 3.5 探针NIR-H_2Se和待测物H_2Se的响应 | 第45-46页 |
| 3.6 探针NIR-H_2Se选择性的测定 | 第46-48页 |
| 3.6.1 对氨基酸类物质选择性的测定 | 第46-47页 |
| 3.6.2 对金属离子选择性的测定 | 第47-48页 |
| 3.6.3 对氧化还原类物质选择性的测定 | 第48页 |
| 3.7 探针NIR-H_2Se反应动力学 | 第48-49页 |
| 3.8 探针NIR-H_2Se的抗光漂白实验 | 第49-50页 |
| 3.9 探针NIR-H_2Se的细胞毒性实验（MTT） | 第50-51页 |
| 3.10 探针NIR-H_2Se的线粒体定位实验 | 第51页 |
| 3.11 常氧、乏氧条件下Na_2SeO_3诱导肿瘤细胞凋亡过程中H_2Se浓度的检测 | 第51-53页 |
| 3.12 常氧、乏氧条件下Na_2SeO_3诱导肿瘤细胞凋亡过程中H_2O_2浓度的检测 | 第53-55页 |
| 3.13 探针NIR-H_2Se活体成像 | 第55-56页 |
| 4、本章小结 | 第56-57页 |
| 参考文献 | 第57-59页 |
| 第三章 双荧光比率法检测Na_2SeO_3诱导肿瘤细胞凋亡过程中H_2Se和O_2~(.-)的浓度变化 | 第59-80页 |
| 1、引言 | 第59-61页 |
| 2、实验部分 | 第61-66页 |
| 2.1 仪器与试剂 | 第61-62页 |
| 2.2 探针NIR-H_2Se的合成 | 第62页 |
| 2.3 化学体系中荧光比率法对H_2Se和O_2~(.-)双检测 | 第62-64页 |
| 2.3.1 两种探针、参比、待测物H_2Se、O_2~(.-)储备液的配制 | 第63页 |
| 2.3.2 两种探针及参比的光谱测试 | 第63页 |
| 2.3.3 H_2Se对探针DHE的干扰测定 | 第63-64页 |
| 2.3.4 两种探针及参比的混合液对O_2~(.-)的响应 | 第64页 |
| 2.3.5 两种探针及参比的混合液对H_2Se的响应 | 第64页 |
| 2.4 两种探针及参比在细胞内的共成像 | 第64-65页 |
| 2.5 荧光比率法对Na_2SeO_3诱导HepG2凋亡过程中H_2Se和O_2~(.-)双检测 | 第65-66页 |
| 2.5.1 常氧条件下荧光比率法对Na_2SeO_3诱导HepG2凋亡过程中H_2Se和O_2~(.-)双检测 | 第65页 |
| 2.5.2 乏氧条件下荧光比率法对Na_2SeO_3诱导HepG2凋亡过程中H_2Se和O_2~(.-)双检测 | 第65-66页 |
| 3、结果与讨论 | 第66-77页 |
| 3.1 两种探针及参比的荧光光谱 | 第66-67页 |
| 3.2 H_2Se对探针DHE的干扰测定 | 第67-68页 |
| 3.3 两种探针及参比的混合液对O_2~(.-)的响应 | 第68-69页 |
| 3.4 两种探针及参比的混合液对H_2Se的响应 | 第69-71页 |
| 3.5 两种探针及参比在细胞内的共成像 | 第71-72页 |
| 3.6 常氧条件下荧光比率法对Na_2SeO_3诱导HepG2凋亡过程中H_2Se和O_2~(.-)双检测 | 第72-73页 |
| 3.7 乏氧条件下荧光比率法对Na_2SeO_3诱导HepG2凋亡过程中H_2Se和O_2~(.-)双检测 | 第73-75页 |
| 3.8 常氧、乏氧条件下Na_2SeO_3诱导HepG2凋亡过程中H_2Se和O_2~(.-)检测结果对比 | 第75-77页 |
| 4、本章小结 | 第77-78页 |
| 参考文献 | 第78-80页 |
| 附：合成化合物谱图 | 第80-86页 |
| 攻读硕士学位期间发表的学术论文和参与的课题 | 第86-87页 |
| 致谢 | 第87页 |
