| 中文摘要 | 第4-7页 |
| Abstract | 第7-9页 |
| 前言 | 第15-17页 |
| 第1章 研究背景及目的 | 第17-41页 |
| 1.1 CD47概述 | 第17-28页 |
| 1.1.1 CD47结构 | 第17-18页 |
| 1.1.2 CD47功能研究与进展 | 第18-21页 |
| 1.1.3 CD47作为配体的功能 | 第21-25页 |
| 1.1.4 CD47-TSP-1 与血管新生相关因子的关系 | 第25-28页 |
| 1.2 肿瘤血管新生与肿瘤 | 第28-29页 |
| 1.3 细胞周期相关因子及其功能 | 第29-36页 |
| 1.3.2 细胞周期各期的特点 | 第30页 |
| 1.3.3 细胞周期限制点对细胞周期的调控和监视作用及机制 | 第30-33页 |
| 1.3.3.2 细胞周期限制点的调控 | 第31-33页 |
| 1.3.4 p53基因的结构和功能 | 第33-34页 |
| 1.3.5 p21基因的结构和功能 | 第34-35页 |
| 1.3.6 MDM2-p53-p21通路及其功能 | 第35-36页 |
| 1.3.7 p53与细胞衰老 | 第36页 |
| 1.4 内皮细胞干性相关研究 | 第36-39页 |
| 1.4.1 内皮细胞干性相关研究 | 第36-37页 |
| 1.4.2 主要干性因子 | 第37-39页 |
| 1.5 CD144（VE-Cadherin）结构与功能 | 第39-40页 |
| 1.6 研究背景及预想 | 第40-41页 |
| 第2章 试验器材及试剂 | 第41-45页 |
| 2.1 小鼠品系 | 第41页 |
| 2.2 主要实验器材 | 第41-42页 |
| 2.3 主要实验试剂 | 第42-43页 |
| 2.4 主要抗体信息 | 第43-45页 |
| 第3章 体内实验 | 第45-61页 |
| 3.1 试验步骤 | 第45-49页 |
| 3.1.1 小鼠肿瘤模型的建立 | 第45-46页 |
| 3.1.2 免疫组化染色 | 第46-49页 |
| 3.1.3 图片及数据统计分析 | 第49页 |
| 3.2 试验结果 | 第49-58页 |
| 3.2.1 采用不同浓度肿瘤细胞对小鼠进行腹股沟皮下注射对肿瘤生长速度的影响 | 第49-50页 |
| 3.2.2 相同浓度肿瘤细胞注射后CD47~(-/-)小鼠与WT小鼠肿瘤生长速度比较 | 第50-52页 |
| 3.2.3 相同注射条件下CD47~(-/-)小鼠与WT小鼠肿瘤坏死程度比较 | 第52-54页 |
| 3.2.4 抗小鼠CD31抗体免疫组化染色结果分析 | 第54-56页 |
| 3.2.5 抗小鼠CD144抗体免疫组化染色结果分析 | 第56-58页 |
| 3.3 讨论 | 第58-61页 |
| 第4章 体外实验 | 第61-81页 |
| 4.1 实验方法与操作 | 第61-69页 |
| 4.1.1 内皮细胞分离纯化及培养传代 | 第61-63页 |
| 4.1.2 内皮细胞衰老试验（b-gal assay半乳糖苷酶染色试验） | 第63-64页 |
| 4.1.3 内皮细胞成管试验 | 第64-65页 |
| 4.1.4 细胞周期检测 | 第65-66页 |
| 4.1.5 c-myc m RNA和p53 m RNA ,p21 m RNA表达的检测 | 第66-68页 |
| 4.1.6 图片及数据统计分析 | 第68-69页 |
| 4.2 结果 | 第69-75页 |
| 4.2.1 抗APC磁珠分选得到 98.8 % CD31+内皮细胞 | 第69-70页 |
| 4.2.2 内皮细胞衰老试验（β-半乳糖苷酶实验） | 第70-71页 |
| 4.2.3 内皮细胞成管试验 | 第71-72页 |
| 4.2.4 利用PI单染色法对内皮细胞中处于不同细胞周期的细胞数量进行检测 | 第72-74页 |
| 4.2.5 CD47~(-/-)和WT内皮细胞p53表达水平的比较 | 第74页 |
| 4.2.6 CD47~(-/-)和WT小鼠内皮细胞p21表达水平的比较 | 第74-75页 |
| 4.2.7 CD47~(-/-)和WT内皮细胞c-myc表达水平的比较 | 第75页 |
| 4.3 讨论 | 第75-81页 |
| 第5章 全文结论 | 第81-83页 |
| 第6章 全文讨论 | 第83-85页 |
| 参考文献 | 第85-97页 |
| 作者简介及在学期间所取得的科研成果 | 第97-98页 |
| 致谢 | 第98页 |
