| 缩略语对照 | 第6-7页 |
| 背景 | 第7-9页 |
| 中文摘要 | 第9-16页 |
| 英文摘要 | 第16-25页 |
| 前言 | 第26-30页 |
| 参考文献 | 第27-30页 |
| 第一部分 Honokiol改善大鼠颅脑创伤后神经功能障碍的实验研究 | 第30-51页 |
| 1 主要材料 | 第30页 |
| 2 方法 | 第30-37页 |
| 2.1 大鼠TBI颅脑损伤模型的建立 | 第30-31页 |
| 2.2 量效关系的确定 | 第31-35页 |
| 2.3 运动和认知功能评估(Beam Walk Test和Morris水迷宫) | 第35-37页 |
| 3 统计方法 | 第37页 |
| 4 结果 | 第37-44页 |
| 4.1 mNSS神经功能缺失评分 | 第37-39页 |
| 4.2 脑含水量比较 | 第39-40页 |
| 4.3 Beam Walk Test | 第40-41页 |
| 4.4 Morris Water Maze | 第41-44页 |
| 5 讨论 | 第44-47页 |
| 6 小结 | 第47-48页 |
| 参考文献 | 第48-51页 |
| 第二部分 Honokiol减轻大鼠颅脑创伤后脑组织病理损害及抑制神经元凋亡的实验研究 | 第51-72页 |
| 1 主要材料 | 第51页 |
| 2 方法 | 第51-56页 |
| 2.1 大鼠TBI颅脑损伤模型的建立 | 第51页 |
| 2.2 TBI后脑损伤体积的测定(H-E染色) | 第51-52页 |
| 2.3 TBI后大鼠皮质和海马CA1区存活神经元测定(Nissl染色) | 第52-53页 |
| 2.4 TBI后大鼠皮质和海马CA1区神经元变性测定(FJ-B染色) | 第53-54页 |
| 2.5 TBI后大鼠皮质和海马CA1区神经元凋亡测定(NeuN+Tunel免疫荧光双标) | 第54-56页 |
| 3 统计方法 | 第56页 |
| 4 结果 | 第56-65页 |
| 4.1 TBI后损伤体积的比较 | 第56-58页 |
| 4.2 TBI后大鼠皮质和海马CA1区存活神经元比较 | 第58-60页 |
| 4.3 TBI大鼠皮质和海马CA1神经元变性 | 第60-62页 |
| 4.4 TBI大鼠皮质和海马CA1区神经元凋亡分析 | 第62-65页 |
| 5 讨论 | 第65-68页 |
| 6 小结 | 第68-69页 |
| 参考文献 | 第69-72页 |
| 第三部分 Honokiol对大鼠颅脑创伤后神经元细胞周期活化的影响 | 第72-97页 |
| 1 主要材料 | 第72页 |
| 2 方法 | 第72-78页 |
| 2.1 大鼠TBI颅脑损伤模型的建立 | 第72页 |
| 2.2 TBI后细胞周期蛋白表达的测定 | 第72-76页 |
| 2.3 TBI后Honokiol对细胞周期蛋白表达的影响 | 第76-77页 |
| 2.4 Honokiol对皮质神经元细胞周期激活的影响(Cyclin D1/E2F1 | 第77-78页 |
| 2.5 Honokiol对细胞周期活化细胞的凋亡影响(Cyclin D1/E2F1 | 第78页 |
| 3 统计方法 | 第78页 |
| 4 结果 | 第78-89页 |
| 4.1 TBI后细胞周期蛋白表达的变化 | 第78-80页 |
| 4.2 TBI后Honokiol对细胞周期蛋白表达的影响 | 第80-83页 |
| 4.3 Honokiol对TBI后皮质神经元细胞周期的活化及周期活化细胞凋亡的影响(Cyclin D1/E2F1+Tunel免疫荧光双标) | 第83-89页 |
| 5 讨论 | 第89-93页 |
| 6 小结 | 第93页 |
| 参考文献 | 第93-97页 |
| 全文总结 | 第97-98页 |
| 文献综述 | 第98-111页 |
| 参考文献 | 第106-111页 |
| 致谢 | 第111-112页 |
| 攻读博士学位期间发表的论文 | 第112页 |
