黄芪发酵多糖提取物组份鉴定及其对猪流行性腹泻的免疫调节作用
| 符号说明 | 第5-10页 |
| 中文摘要 | 第10-12页 |
| Abstract | 第12-14页 |
| 1 前言 | 第15-22页 |
| 1.1 多糖的来源 | 第15页 |
| 1.1.1 动物多糖 | 第15页 |
| 1.1.2 植物多糖 | 第15页 |
| 1.1.3 微生物多糖 | 第15页 |
| 1.2 多糖的提取 | 第15-17页 |
| 1.2.1 溶剂提取 | 第16页 |
| 1.2.2 超声波辅助提取 | 第16页 |
| 1.2.3 酶提取法 | 第16页 |
| 1.2.4 微波辅助萃取法 | 第16-17页 |
| 1.3 多糖的活性 | 第17-19页 |
| 1.3.1 多糖的抗病毒活性 | 第17-18页 |
| 1.3.2 多糖的免疫调节 | 第18页 |
| 1.3.3 多糖的抗氧化活性 | 第18-19页 |
| 1.3.4 多糖的抗肿瘤活性 | 第19页 |
| 1.3.5 多糖的其他活性 | 第19页 |
| 1.4 多糖作为佐剂的使用 | 第19-20页 |
| 1.5 多糖作为添加剂的使用 | 第20页 |
| 1.6 猪流行性腹泻的流行现状 | 第20-21页 |
| 1.7 本研究的目的与意义 | 第21-22页 |
| 2 材料方法 | 第22-29页 |
| 2.1 材料 | 第22-23页 |
| 2.1.1 主要菌株、细胞及病毒 | 第22页 |
| 2.1.2 主要试剂及试剂盒 | 第22页 |
| 2.1.3 主要仪器 | 第22页 |
| 2.1.4 培养基的配制 | 第22-23页 |
| 2.2 多糖提取及粗多糖测定方法 | 第23-25页 |
| 2.2.1 复苏地衣芽孢杆菌 | 第23页 |
| 2.2.2 发酵黄芪多糖的提取 | 第23页 |
| 2.2.3 水提黄芪多糖 | 第23-24页 |
| 2.2.4 葡萄糖标准曲线的制作 | 第24页 |
| 2.2.5 样品粗多糖的测定 | 第24页 |
| 2.2.6 液相色谱测定单糖组成含量 | 第24-25页 |
| 2.3 分子量及分子量分布测定 | 第25页 |
| 2.4 细胞培养及病毒增殖 | 第25-27页 |
| 2.4.1 细胞的培养、传代及接毒 | 第25页 |
| 2.4.2 提取Vero细胞中的总RNA | 第25-26页 |
| 2.4.3 病毒扩增PCR鉴定 | 第26-27页 |
| 2.5 TCID50的测定 | 第27页 |
| 2.6 细胞毒性测定 | 第27-28页 |
| 2.7 PEDV疫苗的免疫 | 第28-29页 |
| 2.7.1 测定血清中的IFN-γ | 第28页 |
| 2.7.2 血清中IL-6的含量测定 | 第28页 |
| 2.7.3 抗体sIgA含量的测定 | 第28-29页 |
| 3 结果 | 第29-40页 |
| 3.1 葡萄糖标准曲线的制作 | 第29-30页 |
| 3.2 发酵黄芪多糖提取含量 | 第30页 |
| 3.3 标准单糖出峰时间及标准曲线相关性 | 第30-32页 |
| 3.4 液相色谱测定单糖含量 | 第32-34页 |
| 3.5 多糖的分子量及分子量分布 | 第34-35页 |
| 3.6 PEDV PCR鉴定 | 第35-36页 |
| 3.7 黄芪多糖的细胞毒性 | 第36-37页 |
| 3.8 不同浓度黄芪多糖对病毒滴度的影响 | 第37页 |
| 3.9 各时间段不同黄芪多糖浓度对病毒滴度的作用 | 第37-38页 |
| 3.10 血清中IL-6、IFN-γ的含量 | 第38-40页 |
| 3.11 sIgA的含量 | 第40页 |
| 4 讨论 | 第40-43页 |
| 5 结论 | 第43-44页 |
| 参考文献 | 第44-50页 |
| 致谢 | 第50页 |
