| 摘要 | 第3-4页 |
| ABSTRACT | 第4-5页 |
| 第一章 前言 | 第9-27页 |
| 1.1 传感器 | 第9-13页 |
| 1.1.1 传感器的定义 | 第9页 |
| 1.1.2 传感器的发展及应用 | 第9-10页 |
| 1.1.3 传感器的分类 | 第10-13页 |
| 1.1.3.1 化学传感器及其分类 | 第10-11页 |
| 1.1.3.2 生物传感器及其分类 | 第11-12页 |
| 1.1.3.3 生物传感器的原理 | 第12-13页 |
| 1.2 化学发光 | 第13-15页 |
| 1.2.1 化学发光的机理及分类 | 第13-14页 |
| 1.2.2 化学发光的条件 | 第14页 |
| 1.2.3 化学发光的定量依据 | 第14-15页 |
| 1.2.4 化学发光分析 | 第15页 |
| 1.3 电致化学发光 | 第15-18页 |
| 1.3.1 电化学发光剂 | 第15-18页 |
| 1.3.1.1 联吡啶钌及其衍生物 | 第16页 |
| 1.3.1.2 鲁米诺及其衍生物 | 第16-17页 |
| 1.3.1.3 量子点及其衍生物 | 第17-18页 |
| 1.3.2 电致化学发光机理 | 第18页 |
| 1.4 复合材料 | 第18-19页 |
| 1.4.1 复合材料的概述 | 第18页 |
| 1.4.2 复合材料的分类 | 第18-19页 |
| 1.4.3 复合材料的特点 | 第19页 |
| 1.4.3.1 树状大分子 | 第19页 |
| 1.4.3.2 树状大分子的性质和结构特点 | 第19页 |
| 1.4.4 复合材料在生物传感器方面的应用 | 第19页 |
| 1.5 DNA适配器 | 第19-25页 |
| 1.5.1 基因工程中的常见工具酶 | 第20-24页 |
| 1.5.1.1 核酸内切酶 | 第21-22页 |
| 1.5.1.2 核酸外切酶 | 第22-23页 |
| 1.5.1.3 DNA连接酶 | 第23页 |
| 1.5.1.4 DNA聚合酶 | 第23-24页 |
| 1.5.2 DNA生物传感器作用的原理 | 第24-25页 |
| 1.5.3 DNA适配器的特性 | 第25页 |
| 1.6 本文研究思路 | 第25-27页 |
| 第二章 新型PAMAM-Au复合物放大的CdSe量子点电致化学发光免疫分析 | 第27-40页 |
| 2.1 前言 | 第27-28页 |
| 2.2 实验方法 | 第28-32页 |
| 2.2.1 主要试剂 | 第28-29页 |
| 2.2.2 仪器装置 | 第29-30页 |
| 2.2.3 双稳定剂包被的CdSe量子点的制备 | 第30页 |
| 2.2.4 新型基底纳米材料PAMAM-Au的合成 | 第30-31页 |
| 2.2.5 PAMAM-Au-CdSe QDs电致化学发光探针的制备 | 第31页 |
| 2.2.6 基于纳米结构的PAMAM-Au的ECL免疫传感器的组装 | 第31-32页 |
| 2.2.6.1 电极的处理 | 第31页 |
| 2.2.6.2 电极的修饰 | 第31页 |
| 2.2.6.3 电极上修饰一抗 | 第31页 |
| 2.2.6.4 抗原的固定 | 第31-32页 |
| 2.2.6.5 免疫传感器组装过程中电化学阻抗的测定 | 第32页 |
| 2.2.6.6 免疫反应的测定 | 第32页 |
| 2.3 结果与讨论 | 第32-39页 |
| 2.3.1 PAMAM-Au-CdSe QDs探针的制备和表征 | 第32-35页 |
| 2.3.2 基于PAMAM-Au-CdSe QDs探针的ECL免疫传感器的组装原理 | 第35-39页 |
| 2.3.2.1 电极修饰过程中电化学阻抗图谱的检测 | 第35-36页 |
| 2.3.2.2 电极修饰过程中扫描电镜的表征 | 第36-37页 |
| 2.3.2.3 电极修饰过程中电致化学发光的表征 | 第37-39页 |
| 2.3.3 ECL免疫传感器对于人IgG的应用 | 第39页 |
| 2.4 结论 | 第39-40页 |
| 第三章 新型碳量子点荧光结合DNA酶切循环放大技术检测凝血酶的研究 | 第40-51页 |
| 3.1 前言 | 第40-41页 |
| 3.2 实验方法 | 第41-44页 |
| 3.2.1 试剂 | 第41-42页 |
| 3.2.2 仪器装置 | 第42-43页 |
| 3.2.3 金胶的制备 | 第43页 |
| 3.2.4 碳量子点的制备 | 第43页 |
| 3.2.5 MB@Au的制备 | 第43页 |
| 3.2.6 DNA溶液的配制与处理 | 第43-44页 |
| 3.2.7 碳量子点探针组装 | 第44页 |
| 3.2.8 在Exo Ⅲ、核酸内切酶作用下的DNA自催化循环 | 第44页 |
| 3.3 结果与讨论 | 第44-50页 |
| 3.3.1 碳量子点的制备及表征 | 第44-46页 |
| 3.3.2 MB@Au的结构表征 | 第46-47页 |
| 3.3.3 基于碳量子点荧光特性的DNA酶循环放大技术检测凝血酶浓度 | 第47-50页 |
| 3.3.3.1 基于碳量子点荧光特性的DNA酶循环放大技术检测凝血酶浓度的机理 | 第47-48页 |
| 3.3.3.2 Exo Ⅲ自催化DNA循环放大技术的凝血酶荧光检测 | 第48-50页 |
| 3.4 结论与展望 | 第50-51页 |
| 第四章 基于双层量子点及DNA循环放大技术电致化学发光检测凝血酶的研究 | 第51-63页 |
| 4.1 前言 | 第51-52页 |
| 4.2 实验方法 | 第52-54页 |
| 4.2.1 试剂 | 第52-53页 |
| 4.2.2 仪器装置 | 第53页 |
| 4.2.3 修饰电极的基底材料AuG的合成 | 第53页 |
| 4.2.4 双稳定剂包被的CdSe量子点的制备 | 第53-54页 |
| 4.2.5 CdSe-NH_2量子点的制备 | 第54页 |
| 4.2.6 淬灭剂Au@Ag的合成 | 第54页 |
| 4.3 结果与讨论 | 第54-62页 |
| 4.3.1 基于Au@Ag淬灭双层量子点的电致化学发光采用DNA酶循环放大技术检测凝血酶的机理 | 第54-56页 |
| 4.3.2 双稳定剂包被的CdSe QDs和氨基CdSe QDs的表征 | 第56-57页 |
| 4.3.3 修饰电极的基底材料AuG的表征 | 第57页 |
| 4.3.4 淬灭剂Au@Ag的表征 | 第57-58页 |
| 4.3.5 基于Au@Ag淬灭双层量子点的电致化学发光采用DNA酶循环放大技术检测凝血酶 | 第58-61页 |
| 4.3.6 基于该ECL方法检测凝血酶的选择性 | 第61页 |
| 4.3.7 真实样品中凝血酶的分析 | 第61-62页 |
| 4.4 结论与展望 | 第62-63页 |
| 结论 | 第63-64页 |
| 参考文献 | 第64-74页 |
| 致谢 | 第74-75页 |
| 攻读学位期间发表及待发表的学术论文目录 | 第75-76页 |
