| 中文摘要 | 第3-5页 |
| 英文摘要 | 第5-6页 |
| 缩略词表 | 第15-16页 |
| 1 绪论 | 第16-30页 |
| 1.1 问题的提出与研究意义 | 第16-17页 |
| 1.1.1 问题的提出 | 第16页 |
| 1.1.2 研究意义 | 第16-17页 |
| 1.2 国内外研究现状 | 第17-27页 |
| 1.2.1 病原学 | 第17-19页 |
| 1.2.2 传播和流行 | 第19-20页 |
| 1.2.3 临床症状 | 第20-21页 |
| 1.2.4 病理特征 | 第21-23页 |
| 1.2.5 感染与免疫 | 第23页 |
| 1.2.6 其它蚊传播病毒 | 第23-25页 |
| 1.2.7 诊断方法 | 第25-27页 |
| 1.3 本研究的目的和研究内容 | 第27-30页 |
| 1.3.1 研究目的 | 第27页 |
| 1.3.2 主要研究内容 | 第27页 |
| 1.3.3 总体技术路线 | 第27-30页 |
| 2 表达东部型马脑脊髓炎病毒E2蛋白的重组水泡性口炎病毒的构建 | 第30-38页 |
| 2.1 引言 | 第30页 |
| 2.2 材料与方法 | 第30-34页 |
| 2.2.1 材料 | 第30-31页 |
| 2.2.2 方法 | 第31-34页 |
| 2.3 结果与分析 | 第34-36页 |
| 2.3.1 嵌合马脑炎E2基因的重组病毒的制备 | 第34页 |
| 2.3.2 特征病毒粒子观察 | 第34-35页 |
| 2.3.3 IFA鉴定 | 第35-36页 |
| 2.3.4 RT-PCR鉴定 | 第36页 |
| 2.4 本章小结 | 第36-38页 |
| 3 嵌合无关序列的核酸(RNA/DNA)质控物质的研制 | 第38-44页 |
| 3.1 引言 | 第38页 |
| 3.2 材料与方法 | 第38-42页 |
| 3.2.1 材料 | 第38-39页 |
| 3.2.2 方法 | 第39-42页 |
| 3.3 结果与分析 | 第42-43页 |
| 3.3.1 阳性质粒的PCR鉴定 | 第42-43页 |
| 3.3.2 RNA鉴定 | 第43页 |
| 3.4 小结 | 第43-44页 |
| 4 病毒特征判读软件的设计和开发 | 第44-68页 |
| 4.1 软件简介 | 第44页 |
| 4.1.1 开发目的 | 第44页 |
| 4.1.2 开发背景 | 第44页 |
| 4.1.3 主要功能 | 第44页 |
| 4.2 开发环境 | 第44-46页 |
| 4.2.1 开发工具的选择 | 第45页 |
| 4.2.2 Microsoft Visual Studio 2008介绍 | 第45页 |
| 4.2.3 C | 第45-46页 |
| 4.3 软件系统框架 | 第46-50页 |
| 4.3.1 软件使用环境的硬件环境 | 第46页 |
| 4.3.2 软件总体架构 | 第46-47页 |
| 4.3.3 软件系统功能结构 | 第47页 |
| 4.3.4 软件的数据结构 | 第47-50页 |
| 4.4 软件子系统功能 | 第50-52页 |
| 4.4.1 文件的读入解析 | 第50页 |
| 4.4.2 电泳数据的存储 | 第50-51页 |
| 4.4.3 Ladder的设置 | 第51页 |
| 4.4.4 电泳图的绘制 | 第51页 |
| 4.4.5 电泳图的过滤 | 第51页 |
| 4.4.6 电泳判读条件的设置 | 第51-52页 |
| 4.4.7 电泳数据的判读 | 第52页 |
| 4.4.8 判读结果的显示 | 第52页 |
| 4.4.9 判读结果的历史记录和保存 | 第52页 |
| 4.4.10 判读结果的报表生成 | 第52页 |
| 4.5 源代码（主要部分） | 第52-67页 |
| 4.5.1 AboutBox1.cs | 第52-53页 |
| 4.5.2 AboutBox1.Designer.cs | 第53-57页 |
| 4.5.3 ConditionChecker.cs | 第57-60页 |
| 4.5.4 DataSetX.Designer.cs | 第60-65页 |
| 4.5.5 DataSetX.xsc | 第65页 |
| 4.5.6 DataSetX.xsd | 第65-67页 |
| 4.6 软件界面 | 第67页 |
| 4.7 小结 | 第67-68页 |
| 5 WsP-mRT-PCR联用Lab-on-Chip检测方法的建立 | 第68-86页 |
| 5.1 引言 | 第68页 |
| 5.2 材料与方法 | 第68-72页 |
| 5.2.1 试剂 | 第68页 |
| 5.2.2 病毒RNA | 第68页 |
| 5.2.3 软件 | 第68页 |
| 5.2.4 引物设计 | 第68-70页 |
| 5.2.5 核酸提取 | 第70页 |
| 5.2.6 Wsp-RT-mPCR的建立 | 第70页 |
| 5.2.7 检测体系的优化 | 第70-72页 |
| 5.2.8 特异性和灵敏度试验 | 第72页 |
| 5.3 结果与分析 | 第72-83页 |
| 5.3.1 方法优化 | 第72-79页 |
| 5.3.1.5 PCR循环参数 | 第76-79页 |
| 5.3.2 特异性试验 | 第79-81页 |
| 5.3.3 灵敏度 | 第81页 |
| 5.3.4 十二种病毒的同步检测 | 第81-83页 |
| 5.4 讨论 | 第83-86页 |
| 6 方法的验证和在重庆地区蚊传播病原体调查中的应用 | 第86-94页 |
| 6.1 引言 | 第86页 |
| 6.2 材料与方法 | 第86-89页 |
| 6.2.1 试剂 | 第86页 |
| 6.2.2 标准阳性病毒RNA | 第86-87页 |
| 6.2.3 软件 | 第87页 |
| 6.2.4 野生蚊子的检测 | 第87-88页 |
| 6.2.5 Wsp-mRT-PCR检测 | 第88页 |
| 6.2.6 系统内外验证 | 第88-89页 |
| 6.2.7 重复性 | 第89页 |
| 6.3 结果与分析 | 第89-92页 |
| 6.3.1 六种标准阳性病毒 | 第89-90页 |
| 6.3.2 野生蚊子 | 第90-91页 |
| 6.3.3 系统内外验证情况 | 第91页 |
| 6.3.4 再现性 | 第91-92页 |
| 6.4 讨论 | 第92-94页 |
| 7 结论与展望 | 第94-98页 |
| 7.1 主要结论 | 第94-95页 |
| 7.2 本研究的创新点 | 第95页 |
| 7.3 后续研究工作的展望 | 第95-98页 |
| 致谢 | 第98-100页 |
| 参考文献 | 第100-110页 |
| 附录 | 第110-112页 |
| A. 作者在攻读学位期间发表的论文目录： | 第110-111页 |
| B. 作者在攻读学位期间承担的科研项目及成果目录： | 第111-112页 |
