| 摘要 | 第4-6页 |
| ABSTRACT | 第6-7页 |
| 符号说明 | 第12-13页 |
| 第一章 前言 | 第13-24页 |
| 1.1 蒙古口蘑概述 | 第13-14页 |
| 1.1.1 蒙古口蘑简介 | 第13页 |
| 1.1.2 蒙古口蘑驯化栽培研究进展 | 第13-14页 |
| 1.2 食用菌担孢子交配类型概述 | 第14-17页 |
| 1.2.1 食用菌担孢子不同交配类型 | 第14-16页 |
| 1.2.2 交配类型鉴定方法 | 第16-17页 |
| 1.3 漆酶概述 | 第17-20页 |
| 1.3.1 漆酶简介 | 第17-18页 |
| 1.3.2 漆酶在食用菌中的生物学功能 | 第18页 |
| 1.3.3 漆酶活性的测定方法 | 第18-19页 |
| 1.3.4 食用菌漆酶基因的表达调控 | 第19-20页 |
| 1.4 实时荧光定量PCR (RT-qPCR) | 第20-22页 |
| 1.4.1 RT-qPCR原理 | 第20-21页 |
| 1.4.2 RT-qPCR定量方法 | 第21页 |
| 1.4.3 RT-qPCR技术的应用 | 第21-22页 |
| 1.5 本论文主要研究内容、目的和意义 | 第22-24页 |
| 第二章 蒙古口蘑分子鉴定、担孢子萌发及初生菌丝生物学特性研究 | 第24-35页 |
| 引言 | 第24页 |
| 2.1 试验材料 | 第24-25页 |
| 2.1.1 供试材料 | 第24页 |
| 2.1.2 生化试剂 | 第24页 |
| 2.1.3 供试培养基 | 第24-25页 |
| 2.1.4 主要仪器 | 第25页 |
| 2.2 试验方法 | 第25-28页 |
| 2.2.1 担孢子收集及其悬液制备 | 第25-26页 |
| 2.2.2 担孢子形态及其萌发状态观察 | 第26页 |
| 2.2.3 初生菌丝的挑选 | 第26页 |
| 2.2.4 初生菌丝菌落形态观察及生长速率测定 | 第26页 |
| 2.2.5 rDNA-ITS方法分子鉴定 | 第26-28页 |
| 2.2.5.1 DNA提取 | 第26-27页 |
| 2.2.5.2 rDNA-ITS PCR体系建立 | 第27页 |
| 2.2.5.3 测序与序列比对 | 第27-28页 |
| 2.3 结果与分析 | 第28-33页 |
| 2.3.1 蒙古口蘑担孢子形态 | 第28-29页 |
| 2.3.2 蒙古口蘑担孢子萌发 | 第29-30页 |
| 2.3.3 初生菌丝验证 | 第30-31页 |
| 2.3.4 初生菌丝生长菌落形态观察 | 第31-32页 |
| 2.3.5 初生菌丝生长速度测定 | 第32页 |
| 2.3.6 rDNA-ITS方法分子鉴定结果 | 第32-33页 |
| 2.4 讨论 | 第33-35页 |
| 第三章 蒙古口蘑担孢子交配类型鉴定 | 第35-41页 |
| 引言 | 第35页 |
| 3.1 试验材料 | 第35-36页 |
| 3.1.1 供试材料 | 第35页 |
| 3.1.2 供试培养基 | 第35页 |
| 3.1.3 主要仪器设备 | 第35-36页 |
| 3.2 试验方法 | 第36-37页 |
| 3.2.1 蒙古口蘑初生菌丝挑选 | 第36页 |
| 3.2.2 蒙古口蘑交配型鉴定 | 第36页 |
| 3.2.2.1 交配型鉴定试验 | 第36页 |
| 3.2.2.2 交配型实得比例的χ~2检验 | 第36页 |
| 3.2.3 蒙古口蘑不同交配型ISSR分子鉴定 | 第36-37页 |
| 3.3 结果与分析 | 第37-40页 |
| 3.3.1 蒙古口蘑担孢子交配类型鉴定结果 | 第37-38页 |
| 3.3.2 交配型实得比例的χ~2检验结果 | 第38-39页 |
| 3.3.3 ISSR分子鉴定结果 | 第39-40页 |
| 3.4 讨论 | 第40-41页 |
| 第四章 温度对蒙古口蘑菌丝体漆酶活性的影响 | 第41-47页 |
| 引言 | 第41页 |
| 4.1 试验材料 | 第41-42页 |
| 4.1.1 供试材料 | 第41页 |
| 4.1.2 供试培养基 | 第41页 |
| 4.1.3 生化试剂 | 第41页 |
| 4.1.4 主要仪器设备 | 第41-42页 |
| 4.2 试验方法 | 第42-43页 |
| 4.2.1 蒙古口蘑次生菌丝体培养 | 第42页 |
| 4.2.2 蒙古口蘑菌丝体漆酶活性定性试验 | 第42页 |
| 4.2.3 蒙古口蘑菌丝体漆酶活性定量试验 | 第42-43页 |
| 4.3 结果与分析 | 第43-45页 |
| 4.3.1 定性试验结果 | 第43-44页 |
| 4.3.2 定量试验结果 | 第44-45页 |
| 4.4 讨论 | 第45-47页 |
| 第五章 RT-qPCR技术分析蒙古口蘑菌丝体漆酶基因的表达特性 | 第47-56页 |
| 引言 | 第47页 |
| 5.1 试验材料 | 第47-48页 |
| 5.1.1 供试材料 | 第47页 |
| 5.1.2 主要试剂 | 第47-48页 |
| 5.1.2.1 主要试剂 | 第47页 |
| 5.1.2.2 主要试剂配方 | 第47-48页 |
| 5.1.3 主要仪器设备 | 第48页 |
| 5.2 试验方法 | 第48-51页 |
| 5.2.1 菌丝体处理见四章 | 第48页 |
| 5.2.2 RNA提取 | 第48页 |
| 5.2.3 RT-qPCR引物效率测定 | 第48-49页 |
| 5.2.4 RT-qPCR检测 | 第49-51页 |
| 5.3 结果与分析 | 第51-54页 |
| 5.3.1 RNA提取结果 | 第51页 |
| 5.3.2 RT-qPCR引物效率测定结果 | 第51页 |
| 5.3.3 低温处理对蒙古口蘑次级菌丝体漆酶基因家族转录的影响 | 第51-54页 |
| 5.3.3.1 五天低温处理漆酶基因家族转录的变化情况 | 第52页 |
| 5.3.3.2 十天低温处理漆酶基因家族转录的变化情况 | 第52-53页 |
| 5.3.3.3 十五天低温处理漆酶基因家族转录的变化情况 | 第53-54页 |
| 5.4 讨论 | 第54-56页 |
| 第六章 总结与展望 | 第56-58页 |
| 6.1 试验结论 | 第56-57页 |
| 6.2 展望 | 第57-58页 |
| 参考文献 | 第58-69页 |
| 附录 | 第69-71页 |
| 致谢 | 第71-72页 |
| 作者攻读硕士学位期间发表和完成的论文目录 | 第72页 |
