| 中文摘要 | 第4-7页 |
| Abstract | 第7-10页 |
| 缩略语/符号说明 | 第14-16页 |
| 前言 | 第16-18页 |
| 研究现状、成果 | 第16-17页 |
| 研究目的、方法 | 第17-18页 |
| 一、HSP47在增生性玻璃体视网膜病变组织中的表达 | 第18-40页 |
| 1.1 材料和方法 | 第18-24页 |
| 1.1.1 材料 | 第18-21页 |
| 1.1.2 方法 | 第21-24页 |
| 1.2 结果 | 第24-34页 |
| 1.2.1 PVR增殖膜的组织病理学特征 | 第24-28页 |
| 1.2.2 PVR动物模型的建 | 第28-30页 |
| 1.2.3 PVR动物模型造模后不同时间点视网膜组织的组织病理学改变 | 第30-34页 |
| 1.3 讨论 | 第34-38页 |
| 1.3.1 发生PVR的危险因素 | 第34-35页 |
| 1.3.2 PVR与细胞因子的表达 | 第35-37页 |
| 1.3.3 PVR动物模型的建立 | 第37-38页 |
| 1.4 小结 | 第38-40页 |
| 二、慢病毒载体介导的HSP47 siRNA对体外培养的ARPE-19细胞上皮间质转化的影响 | 第40-65页 |
| 2.1 材料和方法 | 第41-53页 |
| 2.1.1 材料 | 第41-45页 |
| 2.1.2 方法 | 第45-53页 |
| 2.2 结果 | 第53-61页 |
| 2.2.1 病毒转染ARPE-19细胞的荧光观察 | 第53-54页 |
| 2.2.2 慢病毒转染ARPE-19细胞后细胞活力的检测 | 第54-55页 |
| 2.2.3 Real-time PCR检测HSP47基因沉默效果 | 第55页 |
| 2.2.4 荧光定量PCR测定HSP47、α-SMA、FN和I型胶原蛋白m RNA的表达 | 第55-58页 |
| 2.2.5 Western blot检测HSP47、α-SMA、FN和I型胶原蛋白的蛋白表达量 | 第58-61页 |
| 2.3 讨论 | 第61-64页 |
| 2.3.1 PVR的病理机制研究进展 | 第61-62页 |
| 2.3.2. RNA干扰技术在玻璃体视网膜疾病中的应用进展 | 第62-63页 |
| 2.3.3 RNAi载体技术的研究进展与选择 | 第63-64页 |
| 2.4 小结 | 第64-65页 |
| 三、慢病毒载体介导的HSP47 siRNA对实验性增生性玻璃体视网膜病变的影响 | 第65-83页 |
| 3.1 材料和方法 | 第66-69页 |
| 3.1.1 材料 | 第66-67页 |
| 3.1.2 方法 | 第67-69页 |
| 3.2 结果 | 第69-77页 |
| 3.2.1.动物一般情况 | 第69页 |
| 3.2.2 动物临床情况观察 | 第69-75页 |
| 3.2.3 荧光定量PCR测定各组动物视网膜组织中HSP47、α-SMA、FN和I型胶原蛋白mRNA的相对表达水平 | 第75-76页 |
| 3.2.4 Western blot检测各组动物视网膜组织中HSP47、α-SMA、FN和I型胶原蛋白的蛋白表达 | 第76-77页 |
| 3.3 讨论 | 第77-82页 |
| 3.3.1 PVR的治疗进展 | 第77-80页 |
| 3.3.2 载体选择 | 第80-82页 |
| 3.4 小结 | 第82-83页 |
| 全文结论 | 第83-85页 |
| 论文创新点 | 第85-86页 |
| 参考文献 | 第86-96页 |
| 发表论文和参加科研情况说明 | 第96-97页 |
| 附录 | 第97-98页 |
| 综述一 增生性玻璃体视网膜病变动物模型的研究进展 | 第98-104页 |
| 综述参考文献 | 第101-104页 |
| 综述二 增生性玻璃体视网膜病变的治疗进展 | 第104-111页 |
| 综述参考文献 | 第108-111页 |
| 致谢 | 第111页 |
