| 摘要 | 第6-9页 |
| ABSTRACT | 第9-12页 |
| 第一章 综述 | 第13-31页 |
| 1.1 细胞释放活性小分子的生理、病理意义及检测重要性 | 第13-17页 |
| 1.1.1 RNS的生理及病理意义 | 第13-14页 |
| 1.1.2 ROS的生理及病理意义 | 第14-16页 |
| 1.1.3 RNS和ROS检测的重要性及挑战 | 第16-17页 |
| 1.2 生物活性小分子传感器的定义、原理 | 第17-18页 |
| 1.3 生物活性小分子传感方法的分类 | 第18-20页 |
| 1.3.1 电化学方法 | 第19页 |
| 1.3.2 荧光法 | 第19-20页 |
| 1.3.3 化学发光法 | 第20页 |
| 1.3.4 分光光度法 | 第20页 |
| 1.4 细胞释放活性小分子的电化学检测现状 | 第20-27页 |
| 1.4.1 实时检测活细胞释放NO研究进展 | 第20-23页 |
| 1.4.2 实时检测活细胞释放O_2~(·?)研究进展 | 第23-27页 |
| 1.5 本论文的研究目的及创新点 | 第27-31页 |
| 1.5.1 本论文的立题依据 | 第27-28页 |
| 1.5.2 本论文的研究目的 | 第28页 |
| 1.5.3 本论文的创新点 | 第28-31页 |
| 第二章 实验设计及相关实验方法 | 第31-37页 |
| 2.1 实验试剂及仪器 | 第31-32页 |
| 2.1.1 药品和试剂 | 第31-32页 |
| 2.1.2 实验仪器及设备 | 第32页 |
| 2.2 研究方法 | 第32-37页 |
| 2.2.1 电极的打磨及测试 | 第32-33页 |
| 2.2.2 电化学测试方法 | 第33-34页 |
| 2.2.3 纳米材料的合成方法 | 第34-37页 |
| 第三章 形貌可控的r GO–CeO_2纳米复合材料电极对NO分子的高灵敏实时检测 | 第37-51页 |
| 3.1 前言 | 第37-38页 |
| 3.2 材料及传感器的制备 | 第38-39页 |
| 3.2.1 r GO–CeO_2纳米复合物的合成 | 第38-39页 |
| 3.2.2 r GO–CeO_2/GCE传感器的制备 | 第39页 |
| 3.2.3 细胞培养及实时检测活细胞释放的NO分子方法 | 第39页 |
| 3.3 结果与讨论 | 第39-49页 |
| 3.3.1 r GO–CeO_2纳米复合物的形貌特征及晶体结构 | 第39-42页 |
| 3.3.2 r GO–CeO_2纳米复合物的生成机理 | 第42-43页 |
| 3.3.3 r GO–CeO_2传感器对NO的高灵敏检测及其反应机理 | 第43-45页 |
| 3.3.4 r GO–CeO_2复合物的纳米结构对NO电化学行为的影响 | 第45-46页 |
| 3.3.5 r GO–CeO_2传感器的高稳定性、重现性和选择性 | 第46-48页 |
| 3.3.6 r GO–CeO_2传感器的计时电流响应 | 第48-49页 |
| 3.3.7 实时检测活细胞释放NO分子 | 第49页 |
| 3.4 本章小结 | 第49-51页 |
| 第四章 构建DNA@Mn_3(PO_4)_2/GO复合物超灵敏电化学传感器及实时检测活细胞释放O_2~(·?) | 第51-59页 |
| 4.1 前言 | 第51-52页 |
| 4.2 材料及传感器的制备 | 第52-53页 |
| 4.2.1 DNA@Mn_3(PO_4)_2 的制备 | 第52页 |
| 4.2.2 DNA@Mn_3(PO_4)_2/GO/GCE传感器的制备 | 第52-53页 |
| 4.2.3 细胞培养和实时检测活细胞释放O_2~(·?)的方法 | 第53页 |
| 4.3 结果与讨论 | 第53-58页 |
| 4.3.1 纳米复合物的形貌特征 | 第53-54页 |
| 4.3.2 不同修饰传感器对O_2~(·?)电化学响应对比及反应机理 | 第54页 |
| 4.3.3 DNA@Mn_3(PO_4)_2/GO传感器的计时电流响应 | 第54-56页 |
| 4.3.4 DNA@Mn_3(PO_4)_2/GO传感器的重现性和选择性 | 第56页 |
| 4.3.5 正常细胞和癌细胞释放O_2~(·?)的原位实时检测及对比 | 第56-58页 |
| 4.4 本章小结 | 第58-59页 |
| 第五章 构建活细胞直接生长的DNA/Mn_3(PO_4)_2/VACNT自支撑传感膜及其O_2~(·?)的快速实时高灵敏检测 | 第59-75页 |
| 5.1 前言 | 第59-60页 |
| 5.2 材料及传感杂化膜的制备 | 第60-62页 |
| 5.2.1 VACNT阵列的制备 | 第60-61页 |
| 5.2.2 MDA-MB-231/Mn_3(PO_4)_2/DNA/VACNT/PE杂化膜的制备 | 第61页 |
| 5.2.3 在Mn_3(PO_4)_2/DNA/VACNT/PE杂化膜上培养细胞的方法 | 第61-62页 |
| 5.3 结果与讨论 | 第62-74页 |
| 5.3.1 Mn_3(PO_4)_2/DNA/VACNT/PE杂化膜的形貌特征和元素组成 | 第62-64页 |
| 5.3.2 VACNT/PE膜亲水性能的改善 | 第64页 |
| 5.3.3 VACNT/PE膜的柔韧性和重现性 | 第64-65页 |
| 5.3.4 Mn_3(PO_4)_2/DNA/VACNT/PE杂化膜的细胞培养特性 | 第65-66页 |
| 5.3.5 Mn_3(PO_4)_2/DNA/VACNT/PE杂化膜对O_2~(·?)的高灵敏检测及其反应机理 | 第66-68页 |
| 5.3.6 MDA-MB-231/Mn_3(PO_4)_2/DNA/VACNT/PE杂化膜对O_2~(·?)的计时电流响应 | 第68-70页 |
| 5.3.7 不同生长模式下原位实时检测活细胞释放O_2~(·?)的灵敏度对比 | 第70-74页 |
| 5.4 本章小结 | 第74-75页 |
| 第六章 活细胞生长的三维Pt@GF复合物支架及其释放O_2~(·?)高灵敏原位实时检测的应用 | 第75-89页 |
| 6.1 前言 | 第75-76页 |
| 6.2 材料的合成及三维生物传感器的制备 | 第76-78页 |
| 6.2.1 CVD制备GF | 第76-77页 |
| 6.2.2 Pt@GF复合物的合成 | 第77页 |
| 6.2.3 A375@Pt@GF生物传感器的制备 | 第77页 |
| 6.2.4 在三维Pt@GF复合物上培养细胞的方法 | 第77-78页 |
| 6.3 结果与讨论 | 第78-88页 |
| 6.3.1 不同Pt@GF复合物的形貌及结构特征 | 第78-80页 |
| 6.3.2 细胞在 3D GF和 2D GS上的贴附及生长性能对比 | 第80-81页 |
| 6.3.3 Pt@GF/GCE传感器对O_2~(·?)的高灵敏检测及其反应机理 | 第81-83页 |
| 6.3.4 Pt@GF/GCE传感器的电化学阻抗性能 | 第83-84页 |
| 6.3.5 A375@Pt@GF/GCE生物传感器的选择性及计时电流响应 | 第84-86页 |
| 6.3.6 生长在 3D和 2D传感平台上的活细胞释放O_2~(·?)的实时检测灵敏度对比 | 第86-88页 |
| 6.4 本章小结 | 第88-89页 |
| 第七章 本论文结论和展望 | 第89-93页 |
| 7.1 本论文结论 | 第89-91页 |
| 7.2 展望 | 第91-93页 |
| 参考文献 | 第93-103页 |
| 作者攻读博士学位期间公开发表的学术论文 | 第103-107页 |
| 致谢 | 第107-108页 |
