| 致谢 | 第4-5页 |
| 摘要 | 第5-6页 |
| SUMMARY | 第6页 |
| 第1章 引言 | 第10-30页 |
| 1.1 抗病毒天然免疫概述 | 第10-12页 |
| 1.1.1 天然免疫简介 | 第10-11页 |
| 1.1.2 病毒生活周期概述 | 第11-12页 |
| 1.2 病毒诱导的抗病毒天然免疫反应 | 第12-23页 |
| 1.2.1 病毒诱导的I型干扰素及炎症因子的产生机制 | 第12-18页 |
| 1.2.1.1 Toll样受体介导的抗病毒信号转导机制 | 第13-15页 |
| 1.2.1.2 NOD样受体介导的抗病毒信号转导机制 | 第15-17页 |
| 1.2.1.3 RIG-I样受体介导的抗病毒信号转导机制 | 第17-18页 |
| 1.2.2 炎症反应 | 第18-23页 |
| 1.2.2.1 促炎细胞因子IL-1β及其调节机理 | 第19-20页 |
| 1.2.2.2 促炎细胞因子TNFα及其调节机理 | 第20-23页 |
| 1.3 病毒感染与天然免疫逃逸机制 | 第23-30页 |
| 1.3.1 拉沙热病毒 | 第23-24页 |
| 1.3.2 埃博拉病毒与马尔堡病毒 | 第24-26页 |
| 1.3.4 尼帕病毒 | 第26-27页 |
| 1.3.5 克里米亚刚果出血热病毒 | 第27-30页 |
| 第2章 材料和方法 | 第30-40页 |
| 2.1 实验材料 | 第30-33页 |
| 2.1.1 菌株、细胞、病毒以及细胞因子 | 第30页 |
| 2.1.2 质粒 | 第30页 |
| 2.1.3 引物 | 第30-32页 |
| 2.1.4 仪器、试剂与耗材 | 第32-33页 |
| 2.1.5 其他耗材 | 第33页 |
| 2.2 实验方法 | 第33-40页 |
| 2.2.1 病毒蛋白过表达载体的构建 | 第33-34页 |
| 2.2.2 细胞培养 | 第34页 |
| 2.2.3 细胞转染 | 第34-35页 |
| 2.2.4 荧光素酶报告基因实验 | 第35页 |
| 2.2.5 Western Blot | 第35-36页 |
| 2.2.6 实时荧光定量PCR | 第36-38页 |
| 2.2.7 HEK293T细胞中NLRP3炎症小体重构 | 第38-40页 |
| 第3章 实验结果 | 第40-62页 |
| 3.1 病毒蛋白过表达载体构建结果 | 第40页 |
| 3.2 病毒蛋白对SeV诱导的RLRs信号通路活化调控的筛选结果 | 第40-49页 |
| 3.2.1 荧光素酶报告基因筛选结果 | 第40-45页 |
| 3.2.2 Real-time PCR筛选结果 | 第45-49页 |
| 3.3 Ebola的NP能够协同IFNB1的表达 | 第49-53页 |
| 3.3.1 Ebola的NP能够协同SeV诱导的IFNB1转录 | 第49-51页 |
| 3.3.2 Ebola的NP能够协同NDV和VSV诱导的IFNB1转录 | 第51-52页 |
| 3.3.3 Ebola的NP能够协同SeV诱导的IFNβ的蛋白水平 | 第52-53页 |
| 3.4 病毒蛋白对IFNγ诱导的IRF1报告基因活化调控的筛选结果 | 第53页 |
| 3.5 病毒蛋白对IL-1β和TNFα诱导的NF-kB报告基因活化调控的筛选结果 | 第53-62页 |
| 第4章 结论与讨论 | 第62-66页 |
| 4.1 结论 | 第62-63页 |
| 4.2 讨论 | 第63页 |
| 4.3 展望 | 第63-66页 |
| 参考文献 | 第66-76页 |
| 作者简历 | 第76页 |
