| 摘要 | 第9-11页 |
| Abstract | 第11-13页 |
| 1. 文献综述 | 第14-36页 |
| 1.1 花生叶斑病的研究概况 | 第15-18页 |
| 1.1.1 叶斑病的症状 | 第15-16页 |
| 1.1.2 叶斑病致病菌的研究 | 第16页 |
| 1.1.3 叶斑病的发生规律和防治 | 第16-17页 |
| 1.1.4 花生对叶斑病的抗病机理 | 第17-18页 |
| 1.2 番茄斑萎病毒(Tomato spotted wilt virus,TSWV)的研究概况 | 第18-22页 |
| 1.2.1 TSWV的分布 | 第18-19页 |
| 1.2.2 TSWV的寄主范围及危害症状 | 第19-20页 |
| 1.2.3 TSWV的生物学特性 | 第20页 |
| 1.2.4 TSWV的传播途径 | 第20-21页 |
| 1.2.5 TSWV的检测技术及防治 | 第21-22页 |
| 1.3 花生分子标记研究进展 | 第22-25页 |
| 1.3.1 早期分子标记的发展 | 第22-23页 |
| 1.3.2 SSR标记在花生上的发展 | 第23-24页 |
| 1.3.3 SNP标记在花生上的发展 | 第24-25页 |
| 1.4 花生遗传图谱构建的研究进展 | 第25-28页 |
| 1.4.1 运用早期的分子标记构建的遗传连锁图谱 | 第25页 |
| 1.4.2 利用SSR标记构建的遗传连锁图谱 | 第25-27页 |
| 1.4.3 利用SNP标记构建的遗传连锁图谱 | 第27-28页 |
| 1.4.4 复合图谱的构建 | 第28页 |
| 1.5 花生重要性状的标记鉴定以及QTL定位的研究进展 | 第28-33页 |
| 1.5.1 与性状相关的分子标记的检测 | 第28-30页 |
| 1.5.2 花生重要性状QTL的定位 | 第30-33页 |
| 1.6 利用不同花生种质进行性状定位 | 第33-34页 |
| 1.7 本研究目的和意义 | 第34-36页 |
| 2. 利用SSR标记分析中国、美国和印度花生种质的遗传多样性和群体结构 | 第36-62页 |
| 2.1 实验材料 | 第37页 |
| 2.2 实验方法 | 第37-41页 |
| 2.2.1 花生基因组DNA的提取 | 第37-39页 |
| 2.2.2 SSR标记分析 | 第39-40页 |
| 2.2.3 数据采集与统计分析 | 第40-41页 |
| 2.3 结果与分析 | 第41-48页 |
| 2.3.1 SSR多态性分析 | 第41页 |
| 2.3.2 遗传多样性分析 | 第41-42页 |
| 2.3.3 花生品种(系)间遗传距离的分析 | 第42-45页 |
| 2.3.4 基于系统树的聚类分析 | 第45-47页 |
| 2.3.5 群体结构分析 | 第47-48页 |
| 2.4 讨论 | 第48-62页 |
| 2.4.1 分子标记的多样性 | 第48-49页 |
| 2.4.2 不同区域的多样性 | 第49-50页 |
| 2.4.3 群体的结构分析 | 第50-62页 |
| 3. 利用SSR标记鉴定花生F_1真假杂 | 第62-71页 |
| 3.1 材料与方法 | 第63-64页 |
| 3.1.1 供试材料 | 第63页 |
| 3.1.2 DNA提取与鉴定用引物 | 第63-64页 |
| 3.1.3 SSR标记分析 | 第64页 |
| 3.2 结果与分析 | 第64-67页 |
| 3.2.1 杂交F_1田间表型鉴定 | 第64页 |
| 3.2.2 亲本间的SSR标记多态性 | 第64-65页 |
| 3.2.3 真假杂种鉴定结果 | 第65-67页 |
| 3.3 讨论 | 第67-71页 |
| 4. 利用F_2代遗传群体构建花生分子遗传连锁图谱 | 第71-82页 |
| 4.1 材料与引物 | 第71-72页 |
| 4.1.1 试验材料 | 第71页 |
| 4.1.2 试验所用引物 | 第71页 |
| 4.1.3 试剂和仪器 | 第71-72页 |
| 4.2 试验方法 | 第72-73页 |
| 4.2.1 亲本和群体材料基因组DNA的提取及检测 | 第72页 |
| 4.2.2 DNA质量和浓度的检测 | 第72页 |
| 4.2.3 PCR反应体系及PCR反应程序 | 第72页 |
| 4.2.4 电泳程序 | 第72-73页 |
| 4.2.5 数据统计及分析 | 第73页 |
| 4.3 结果与分析 | 第73-77页 |
| 4.3.1 群体多态性分析 | 第73页 |
| 4.3.2 标记的偏分离分析 | 第73页 |
| 4.3.3 构建花生分子遗传图谱 | 第73-77页 |
| 4.4 讨论 | 第77-82页 |
| 5. 利用F_2和F_5遗传连锁图谱进行抗病性QTL分析 | 第82-103页 |
| 5.1 材料与方法 | 第83-85页 |
| 5.1.1 群体的构建 | 第83页 |
| 5.1.2 DNA分离、亲本多态性筛选以及图谱的构建 | 第83页 |
| 5.1.3 花生的抗病性调查 | 第83-84页 |
| 5.1.4 不同图谱间标记命名的统一 | 第84页 |
| 5.1.5 遗传图谱的构建和QTL分析 | 第84-85页 |
| 5.2 结果 | 第85-100页 |
| 5.2.1 两个遗传连锁图谱与其他图谱的比较 | 第85-86页 |
| 5.2.2 对所有病害抗性的QTL分析 | 第86-87页 |
| 5.2.3 花生抗蓟马QTL分析 | 第87-94页 |
| 5.2.4 花生抗TSWV的QTL分析 | 第94-95页 |
| 5.2.5 花生抗叶斑病的QTL分析 | 第95-96页 |
| 5.2.6 不同性状间的共同QTL | 第96-100页 |
| 5.2.7 两个图谱间的共同的QTL分析 | 第100页 |
| 5.3 讨论 | 第100-103页 |
| 6. F_9遗传连锁图谱的构建以及抗病性QTL的分析 | 第103-118页 |
| 6.1 材料与方法 | 第103-104页 |
| 6.1.1 试验所用群体 | 第103页 |
| 6.1.2 DNA提取 | 第103页 |
| 6.1.3 SSR分析 | 第103页 |
| 6.1.4 遗传图谱的构建 | 第103页 |
| 6.1.5 花生叶斑病和TSWV的抗性鉴定 | 第103-104页 |
| 6.1.6 QTL的检测 | 第104页 |
| 6.2 结果与分析 | 第104-115页 |
| 6.2.1 群体SSR多态性分析 | 第104页 |
| 6.2.2 分子遗传图谱的构建 | 第104-107页 |
| 6.2.3 F9遗传图谱与二倍体花生的物理图谱标记的比较 | 第107-108页 |
| 6.2.4 与早斑病抗性相关的QTL的检测与分析 | 第108页 |
| 6.2.5 与晚斑病抗性相关的QTL的检测与分析 | 第108-115页 |
| 6.2.6 与TSWV抗性相关的QTL的检测与分析 | 第115页 |
| 6.3 讨论 | 第115-118页 |
| 全文小结 | 第118-119页 |
| 展望 | 第119-120页 |
| 参考文献 | 第120-144页 |
| 附录 | 第144-158页 |
| 致谢 | 第158-159页 |
| 个人简介 | 第159-160页 |
