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重组高产H1N1亚型猪流感灭活疫苗的制备及免疫保护效力评价

摘要第11-13页
Abstract第13-14页
1 前言第15-26页
    1.1 猪流感第15-19页
        1.1.1 猪流感病毒形态结构第15-16页
        1.1.2 猪流感病毒基因组结构和编码蛋白的功能第16-17页
        1.1.3 猪流感病毒遗传演化第17页
        1.1.4 古典H1N1亚型流感病毒第17页
        1.1.5 禽源H1N1亚型流感病毒第17-18页
        1.1.6 重组的H3N2、H1N2和H1N1亚型流感病毒第18-19页
    1.2 猪流感疫苗概况第19-24页
        1.2.1 灭活疫苗第19-20页
        1.2.2 弱毒疫苗第20-21页
        1.2.3 亚单位疫苗第21-22页
        1.2.4 活载体疫苗第22页
        1.2.5 核酸疫苗第22-23页
        1.2.6 通用型疫苗第23-24页
    1.3 培养制备流感疫苗概况第24-26页
        1.3.1 鸡胚培养第24页
        1.3.2 MDCK细胞培养第24-25页
        1.3.3 Vero细胞培养第25-26页
2 材料与方法第26-46页
    2.1 试验材料第26-28页
        2.1.1 毒株和质粒第26页
        2.1.2 细胞、菌种和鸡胚第26页
        2.1.3 试验动物第26页
        2.1.4 主要试剂第26-27页
        2.1.5 主要仪器设备第27页
        2.1.6 主要溶液试剂的配置第27-28页
    2.2 试验方法第28-46页
        2.2.1 重组质粒的构建第28-32页
            2.2.1.1 引物的设计和合成第28页
            2.2.1.2 病毒RNA的提取和cDNA合成第28-29页
            2.2.1.3 病毒HA和NA基因的扩增第29页
            2.2.1.4 扩增产物的回收、鉴定和纯化第29-30页
            2.2.1.5 载体和HA、NA基因片段的酶切第30-31页
            2.2.1.6 载体和HA、NA基因片段的连接第31页
            2.2.1.7 目的基因和载体的转化第31页
            2.2.1.8 重组质粒SH1/PR8的鉴定第31-32页
        2.2.2 重组H1N1亚型猪流感病毒SH1/PR8的拯救第32-34页
            2.2.2.1 重组质粒的提取第32-33页
            2.2.2.2 重组质粒的转染第33页
            2.2.2.3 重组病毒SH1/PR8的鉴定第33-34页
        2.2.3 重组病毒SH1/PR8和原始病毒SH1在MDCK细胞上生长曲线的测定第34-35页
            2.2.3.1 SH1/PR8和SH1的TCID50检测第34-35页
            2.2.3.2 SH1/PR8和SH1的HA效价检测第35页
        2.2.4 SH1/PR8和SH1在MDCK细胞上蚀斑的检测第35-36页
        2.2.5 重组H1N1亚型SIV单价灭活疫苗的制备第36页
        2.2.6 动物试验第36-43页
            2.2.6.1 小鼠试验第36-37页
            2.2.6.2 HI抗体效价检测第37-38页
            2.2.6.3 血清中和抗体效价检测第38页
            2.2.6.4 血清中特异性IgG抗体效价检测第38-39页
            2.2.6.5 攻毒后第 3、5 天肺脏组织病毒含量检测及病理学观察第39-40页
            2.2.6.6 攻毒后14天小鼠体重和存活率的变化第40页
            2.2.6.7 猪试验第40-41页
            2.2.6.8 血清中抗体的检测第41-42页
            2.2.6.9 攻毒后第5天鼻拭子、鼻甲骨和肺泡灌洗液病毒含量检测第42页
            2.2.6.10 攻毒后第5天猪肺脏组织病理学观察第42-43页
        2.2.7 重组H1N1亚型SIV二价灭活疫苗的制备及免疫保护评价第43-46页
            2.2.7.1 重组病毒G11/PR8和原始病毒G11生长曲线的测定第43页
            2.2.7.2 G11/PR8和G11的TCID50检测第43页
            2.2.7.3 G11/PR8和G11的HA效价检测第43页
            2.2.7.4 重组H1N1亚型SIV二价灭活疫苗的制备第43页
            2.2.7.5 小鼠试验第43-44页
            2.2.7.6 HI抗体效价检测第44-45页
            2.2.7.7 血清中和抗体效价检测第45页
            2.2.7.8 血清中特异性IgG抗体效价检测第45页
            2.2.7.9 攻毒后第 3、5 天肺脏组织病毒含量检测及病理学观察第45页
            2.2.7.10 攻毒后14天小鼠体重和存活率的变化第45-46页
3 结果与分析第46-68页
    3.1 重组质粒的构建第46-47页
        3.1.1 原始病毒SH1的HA和NA基因扩增第46页
        3.1.2 重组质粒PBD-HA和PBD-NA菌液PCR鉴定第46-47页
        3.1.3 重组质粒的测序鉴定第47页
    3.2 重组H1N1亚型猪流感病毒SH1/PR8的拯救第47页
    3.3 拯救的重组H1N1亚型猪流感病毒SH1/PR8的鉴定第47-48页
    3.4 SH1/PR8和在MDCK细胞上的生长曲线第48-49页
        3.4.1 SH1/PR8和SH1的TCID50检测第48页
        3.4.2 SH1/PR8和SH1的HA效价检测第48-49页
    3.5 SH1/PR8和SH1在MDCK细胞上蚀斑的大小第49-50页
    3.6 重组H1N1亚型SIV单价灭活疫苗的保护效力评价第50-59页
        3.6.1 小鼠试验结果第50页
        3.6.2 HI抗体效价第50-51页
        3.6.3 血清中和抗体效价第51页
        3.6.4 血清中特异性IgG抗体效价第51-52页
        3.6.5 攻毒后第 3、5 天小鼠肺脏组织病毒含量第52-53页
        3.6.6 攻毒后第5天肺脏组织病理学的变化第53-54页
        3.6.7 攻毒后14天小鼠体重的变化第54页
        3.6.8 攻毒后14天小鼠存活率的变化第54-55页
        3.6.9 猪试验结果第55页
        3.6.10 猪血清中的抗体的效价第55-57页
        3.6.11 攻毒后第5天猪鼻试子、鼻甲骨和肺泡灌洗液病毒的含量第57-58页
        3.6.12 攻毒后第5天猪肺脏病变观察第58-59页
    3.7 重组H1N1亚型SIV二价灭活疫苗的制备及保护效力评价第59-68页
        3.7.1 重组病毒G11/PR8和原始病毒G11在MDCK细胞上的生长曲线第59-60页
        3.7.2 小鼠试验结果第60页
        3.7.3 HI抗体效价第60-61页
        3.7.4 血清中和抗体效价第61-62页
        3.7.5 血清中特异性IgG抗体效价第62-63页
        3.7.6 攻毒后第 3、5 天肺脏组织病毒的含量第63-64页
        3.7.7 攻毒后第5天肺脏组织病理学变化第64-66页
        3.7.8 毒后14天小鼠体重的变化第66-67页
        3.7.9 攻毒后14天小鼠存活率的变化第67-68页
4 讨论第68-70页
5 结论第70-71页
参考文献第71-80页
致谢第80-81页
攻读硕士学位期间发表的论文第81页

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