| 摘要 | 第4-6页 |
| ABSTRACT | 第6-7页 |
| 第一章 绪论 | 第12-26页 |
| 引言 | 第12页 |
| 1.1 表面活性剂 | 第12-13页 |
| 1.1.1 表面活性剂的结构与类型 | 第12页 |
| 1.1.2 表面活性剂的性质 | 第12-13页 |
| 1.2 生物表面活性剂 | 第13-16页 |
| 1.2.1 生物表面活性剂的化学结构与特性 | 第13-14页 |
| 1.2.2 生物表面活性剂的生理功能 | 第14-15页 |
| 1.2.3 生物表面活性剂的分类 | 第15页 |
| 1.2.4 生物表面活性剂的应用 | 第15-16页 |
| 1.3 鼠李糖脂表面活性剂 | 第16-18页 |
| 1.3.1 鼠李糖脂的结构和分类 | 第16-17页 |
| 1.3.2 鼠李糖脂的特性与应用 | 第17-18页 |
| 1.3.3 鼠李糖脂的生物合成过程 | 第18页 |
| 1.4 鼠李糖脂高产菌株选育 | 第18-21页 |
| 1.4.1 菌种诱变 | 第18-19页 |
| 1.4.2 菌种筛选 | 第19-21页 |
| 1.5 鼠李糖脂的生产 | 第21-22页 |
| 1.5.1 鼠李糖脂生产方法 | 第21页 |
| 1.5.2 发酵法生产鼠李糖脂 | 第21-22页 |
| 1.6 鼠李糖脂的分离提纯 | 第22-23页 |
| 1.7 本课题的研究目的意义及内容 | 第23-26页 |
| 1.7.1 研究目的及意义 | 第23页 |
| 1.7.2 研究内容 | 第23-26页 |
| 第二章 甘油为碳源鼠李糖脂高产菌株的紫外诱变筛选 | 第26-40页 |
| 引言 | 第26-27页 |
| 2.1 实验材料 | 第27-29页 |
| 2.1.1 仪器与试剂 | 第27-28页 |
| 2.1.2 菌种 | 第28页 |
| 2.1.3 培养基 | 第28-29页 |
| 2.2 实验方法 | 第29-32页 |
| 2.2.1 鼠李糖脂的定量测定 | 第29-30页 |
| 2.2.2 原始菌株FMO-H-1生长规律 | 第30页 |
| 2.2.3 单细胞菌悬液的制备 | 第30-31页 |
| 2.2.4 诱变剂量的确定 | 第31页 |
| 2.2.5 菌株的UV诱变与初筛 | 第31-32页 |
| 2.2.6 突变菌株的摇瓶评测复筛 | 第32页 |
| 2.2.7 突变菌株发酵液的表面张力测定 | 第32页 |
| 2.2.8 菌株ZGR6的遗传稳定性 | 第32页 |
| 2.3 结果与分析 | 第32-37页 |
| 2.3.1 鼠李糖标准曲线 | 第32-33页 |
| 2.3.2 菌株FMO-H-1的生长曲线 | 第33-34页 |
| 2.3.3 诱变剂量的确定 | 第34页 |
| 2.3.4 初筛蓝色凝胶平板 | 第34-35页 |
| 2.3.5 突变菌株摇瓶复筛结果 | 第35-36页 |
| 2.3.6 高产突变菌株发酵液表面张力测定 | 第36-37页 |
| 2.3.7 菌株ZGR6遗传稳定性考察 | 第37页 |
| 2.4 本章小结 | 第37-40页 |
| 第三章 甘油为碳源鼠李糖脂发酵工艺研究 | 第40-52页 |
| 引言 | 第40页 |
| 3.1 实验材料 | 第40-41页 |
| 3.1.1 菌种 | 第40-41页 |
| 3.1.2 培养基 | 第41页 |
| 3.1.3 仪器与试剂 | 第41页 |
| 3.2 实验方法 | 第41-43页 |
| 3.2.1 鼠李糖脂定量测定 | 第41-42页 |
| 3.2.2 培养基碳源种类优化 | 第42页 |
| 3.2.3 培养基碳源浓度优化 | 第42页 |
| 3.2.4 培养基氮源优化 | 第42页 |
| 3.2.5 培养基无机盐正交优化实验 | 第42-43页 |
| 3.2.6 鼠李糖脂发酵动态过程 | 第43页 |
| 3.3 结果与分析 | 第43-51页 |
| 3.3.1 鼠李糖脂的测定 | 第43-44页 |
| 3.3.2 碳源种类对鼠李糖脂产量的影响 | 第44-45页 |
| 3.3.3 碳源浓度对鼠李糖脂产量的影响 | 第45-46页 |
| 3.3.4 氮源对鼠李糖脂产量的影响 | 第46-47页 |
| 3.3.5 无机盐对鼠李糖脂产量的影响 | 第47-49页 |
| 3.3.6 原始菌FMO-H-1与突变菌ZGR6的发酵动态过程 | 第49-50页 |
| 3.3.7 不同培养基中突变菌ZGR6的发酵动态过程 | 第50-51页 |
| 3.4 本章小结 | 第51-52页 |
| 第四章 发酵液中鼠李糖脂的吸附-酸沉淀分离工艺研究 | 第52-64页 |
| 引言 | 第52页 |
| 4.1 实验材料 | 第52-53页 |
| 4.1.1 菌种 | 第52页 |
| 4.1.2 培养基 | 第52-53页 |
| 4.1.3 仪器与试剂 | 第53页 |
| 4.2 实验方法 | 第53-56页 |
| 4.2.1 鼠李糖脂的发酵生产 | 第53页 |
| 4.2.2 发酵液的预处理 | 第53-54页 |
| 4.2.3 鼠李糖脂含量的测定 | 第54页 |
| 4.2.4 鼠李糖脂的活性炭吸附 | 第54页 |
| 4.2.5 酸沉淀辅助活性炭吸附鼠李糖脂 | 第54-55页 |
| 4.2.6 鼠李糖脂脱附洗脱剂的选择 | 第55页 |
| 4.2.7 鼠李糖脂洗脱时间的选择 | 第55页 |
| 4.2.8 鼠李糖脂的分离提纯 | 第55页 |
| 4.2.9 鼠李糖脂粗品纯度的测定 | 第55-56页 |
| 4.2.10 鼠李糖脂粗品的TLC分析 | 第56页 |
| 4.2.11 鼠李糖脂粗品的CMC值测定 | 第56页 |
| 4.3 结果与讨论 | 第56-62页 |
| 4.3.1 鼠李糖脂发酵液的预处理 | 第56-57页 |
| 4.3.2 鼠李糖脂在活性炭上的吸附规律 | 第57-58页 |
| 4.3.3 活性炭吸附辅助酸沉淀分离鼠李糖脂 | 第58-59页 |
| 4.3.4 不同洗脱剂的洗脱效果 | 第59-60页 |
| 4.3.5 鼠李糖脂洗脱时间的选择 | 第60页 |
| 4.3.6 鼠李糖脂产品提纯 | 第60-61页 |
| 4.3.7 鼠李糖脂粗品纯度分析 | 第61页 |
| 4.3.8 鼠李糖脂粗品TLC分析 | 第61页 |
| 4.3.9 鼠李糖脂CMC测定结果 | 第61-62页 |
| 4.4 本章小结 | 第62-64页 |
| 结论与展望 | 第64-68页 |
| 结论 | 第64-65页 |
| 展望 | 第65-68页 |
| 参考文献 | 第68-74页 |
| 攻读硕士学位期间取得的科研成果 | 第74-76页 |
| 致谢 | 第76页 |
