中文摘要 | 第2-3页 |
Abstract | 第3页 |
中文文摘 | 第4-9页 |
绪论 | 第9-23页 |
1 缺血性脑损伤的研究进展 | 第9-13页 |
1.1 缺血性脑损伤简介 | 第9页 |
1.2 缺血性脑损伤的发病机制 | 第9-12页 |
1.3 缺血性脑损伤治疗现状 | 第12-13页 |
2 细胞周期依赖性蛋白激酶(CDKs)在缺血性损伤中的研究现状及趋势 | 第13-17页 |
2.1 细胞周期概述 | 第13-15页 |
2.2 细胞周期依赖性蛋白激酶及其激活子在缺血性损伤中的研究现状 | 第15页 |
2.3 CDK5在神经细胞中的亚细胞定位与功能 | 第15-16页 |
2.4 CDK5在缺血性脑损伤中的研究现状 | 第16-17页 |
3 BAG3的生物学功能及在缺血性损伤中的研究现状及趋势 | 第17-18页 |
4 细胞氧糖剥夺模型概述 | 第18-20页 |
4.1 氧糖剥夺(Oxygen-glucose deprivation)模型简介 | 第18-19页 |
4.2 原代神经细胞在氧糖剥夺模型中的研究进展 | 第19-20页 |
5 立论依据 | 第20-23页 |
第一章 材料与方法 | 第23-35页 |
1.1 材料 | 第23-26页 |
1.1.1 培养基、抗体、试剂和化学药品 | 第23-24页 |
1.1.2 实验动物 | 第24页 |
1.1.3 主要试剂配制 | 第24-25页 |
1.1.4 实验仪器设备 | 第25-26页 |
1.2 实验方法 | 第26-35页 |
1.2.1 细胞培养 | 第26-27页 |
1.2.2 不同细胞总蛋白提取 | 第27页 |
1.2.3 氧糖剥夺模型构建 | 第27-28页 |
1.2.4 蛋白质免疫印迹 | 第28-30页 |
1.2.5 细胞总RNA提取 | 第30页 |
1.2.6 RNA的逆转录 | 第30页 |
1.2.7 实时荧光定量PCR | 第30-31页 |
1.2.8 MTT法 | 第31页 |
1.2.9 流式细胞术 | 第31-32页 |
1.2.10 细胞免疫荧光染色 | 第32页 |
1.2.11 Brdu染色 | 第32-33页 |
1.2.12 数据统计 | 第33-35页 |
第二章 实验结果 | 第35-49页 |
2.1 细胞纯度鉴定 | 第35-36页 |
2.2 原代星形胶质细胞氧糖剥夺模型中,细胞周期相关蛋白的水平 | 第36-39页 |
2.2.1 COCL_2处理原代星形胶质细胞后,细胞周期相关蛋白的表达 | 第36-37页 |
2.2.2 原代星形胶质细胞经三气培养箱处理后,细胞周期相关蛋白水平变化 | 第37-39页 |
2.3 氧糖剥夺条件下,原代星形胶质细胞中CDK5与BAG3的定位情况 | 第39-40页 |
2.4 氧糖剥夺条件下,原代星形胶质细胞发生了反应性增殖 | 第40-41页 |
2.5 氧糖剥夺处理促使原代星形胶质细胞发生凋亡 | 第41-42页 |
2.6 氧糖剥夺条件下,神经元中PS291-BAG3的蛋白水平及CDK5与BAG3的定位情况 | 第42-43页 |
2.7 氧糖剥夺条件下,神经元进入了细胞周期 | 第43-45页 |
2.8 氧糖剥夺处理引起神经元凋亡 | 第45-46页 |
2.9 氧糖剥夺处理原代星形胶质细胞后,CDK5活性降低 | 第46-49页 |
第三章 讨论 | 第49-53页 |
第四章 结论 | 第53-55页 |
参考文献 | 第55-63页 |
攻读学位期间承担的科研任务与主要成果 | 第63-65页 |
致谢 | 第65-67页 |
个人简历 | 第67-71页 |