| 摘要 | 第1-6页 |
| Abstract | 第6-9页 |
| 缩写表 | 第9-16页 |
| 第一章 文献综述 | 第16-46页 |
| 1. 植物抵御热激胁迫的研究进展 | 第16-23页 |
| ·植物如何抵御非生物胁迫 | 第16-17页 |
| ·植物抵御热激胁迫的分子机制研究及国内外研究进展 | 第17-23页 |
| ·热激胁迫对植物生理生化的影响 | 第17-18页 |
| ·植物耐热性及如何抵御热激胁迫的机制 | 第18-23页 |
| ·热激蛋白 | 第18-20页 |
| ·热转录因子 | 第20-21页 |
| ·细胞信号传导与热激胁迫的关系 | 第21-22页 |
| ·激素与热激胁迫的关系 | 第22页 |
| ·热激胁迫对细胞膜结构的影响 | 第22-23页 |
| ·其它与热激胁迫相关的因素 | 第23页 |
| 2. 植物细胞微丝骨架 | 第23-28页 |
| ·微丝骨架介绍 | 第23-26页 |
| ·细胞骨架概括 | 第23-24页 |
| ·微丝骨架的结构和功能 | 第24-26页 |
| ·肌动蛋白结合蛋白简介 | 第26-27页 |
| ·微丝动态变化与非生物胁迫的关系 | 第27-28页 |
| 3. Capping蛋白的分子结构、生理功能以及调控机制 | 第28-44页 |
| ·Capping蛋白生化特性 | 第29-33页 |
| ·Capping蛋白的生化特性 | 第29-30页 |
| ·Capping蛋白的生理活性 | 第30页 |
| ·Capping蛋白在细胞中的研究 | 第30-31页 |
| ·Capping蛋白的序列保守性和异型体 | 第31-33页 |
| ·Capping蛋白与actin结合的机理 | 第33-35页 |
| ·Capping蛋白结构研究 | 第33-35页 |
| ·Capping蛋白C末端的移动性 | 第35页 |
| ·Capping蛋白抑制因子与Capping蛋白的相互作用 | 第35-39页 |
| ·多磷酸肌醇与Capping蛋白的相互作用 | 第35-36页 |
| ·抑制因子与Capping蛋白结合的蛋白序列以及CARMIL,CKIP-1和CD2AP对Capping蛋白的抑制作用 | 第36-37页 |
| ·间接作用于Capping蛋白的抑制因子 | 第37-39页 |
| ·其它抑制因子 | 第39页 |
| ·Capping蛋白在复杂细胞过程中的作用 | 第39-42页 |
| ·基于肌动蛋白的质膜活力 | 第39-40页 |
| ·Capping蛋白在横纹肌肌小节Z-line中的作用 | 第40-41页 |
| ·Capping蛋白在果蝇的发育中的重要作用 | 第41页 |
| ·Capping蛋白与动力蛋白的关系 | 第41-42页 |
| ·植物中capping蛋白的研究进展 | 第42-43页 |
| ·Capping蛋白研究展望 | 第43-44页 |
| 4. 本实验的研究目的和意义 | 第44-46页 |
| 第二章 材料与方法 | 第46-57页 |
| 1. 实验材料 | 第46-48页 |
| ·动植物材料 | 第46页 |
| ·载体、菌株及工具酶 | 第46页 |
| ·实验所需溶液 | 第46-48页 |
| 2. 实验方法 | 第48-57页 |
| ·拟南芥植株的培养种植 | 第48页 |
| ·植物总RNA的提取及cDNA的克隆 | 第48-49页 |
| ·植物总RNA提取及反转录 | 第48-49页 |
| ·PCR扩增 | 第49页 |
| ·AtCP基因体内不同表达模式研究的相关方法 | 第49-55页 |
| ·载体构建 | 第49-50页 |
| ·Realtime PCR | 第50-51页 |
| ·蛋白纯化及抗体制备 | 第51-53页 |
| ·蛋白纯化 | 第51-52页 |
| ·多克隆抗体制备及校价检测 | 第52-53页 |
| ·植物总蛋白提取、抗体制备及western blot分析 | 第53-54页 |
| ·植物总蛋白提取 | 第53页 |
| ·抗体纯化 | 第53-54页 |
| ·Western blot分析 | 第54页 |
| ·农杆菌介导的拟南芥植株转化及纯合体的筛选 | 第54-55页 |
| ·GUS染色 | 第55页 |
| ·亚细胞定位 | 第55页 |
| ·植物基因组DNA提取 | 第55页 |
| ·拟南芥幼苗热激处理 | 第55-56页 |
| ·微丝荧光标记 | 第56页 |
| ·图像处理和数据分析 | 第56-57页 |
| 第三章 结果与分析 | 第57-79页 |
| 1. AtCPA、AtCPB全长CDS的克隆 | 第57-58页 |
| ·拟南芥植株叶片总RNA的提取及质量鉴定 | 第57页 |
| ·AtCPA全长CDS的克隆 | 第57-58页 |
| ·AtCPB1、AtCPB2全长CDS的克隆 | 第58页 |
| 2. AtCPA、AtCPB在体内具有不同的表达模式 | 第58-67页 |
| ·转录水平分析AtCPA、AtCPB在拟南芥植株不同组织中的表达量 | 第60-61页 |
| ·蛋白水平分析验证AtCPA、AtCPB在拟南芥植株体内不同的表达模式 | 第61-64页 |
| ·AtCPA、AtCPB重组蛋白纯化,多克隆抗体制备及效价检测 | 第61-63页 |
| ·Western blot分析验证AtCPA、AtCPB在体内具有不同的表达模式 | 第63-64页 |
| ·AtCPA、AtCPB启动子GUS活性的组织特异性分析 | 第64-67页 |
| ·AtCPA、AtCPB启动子序列克隆 | 第64-65页 |
| ·AtCPA、AtCPB启动子GUS活性的组织特异性分析 | 第65-67页 |
| ·AtCPA、AtCPB的亚细胞定位 | 第67页 |
| 3. T-DNA插入突变体表型观察 | 第67-71页 |
| ·纯合突变体鉴定 | 第68-69页 |
| ·T-DNA插入突变体精确插入位点的确定 | 第69-70页 |
| ·Realtime PCR检测T-DNA插入突变体植株 | 第70-71页 |
| ·T-DNA插入突变体的表型观察 | 第71页 |
| 4. AtCPA、AtCPB在热激胁迫中的功能研究 | 第71-76页 |
| ·生物信息学预测 | 第71-73页 |
| ·热激处理下AtCPA、AtCPB的表达量变化 | 第73-75页 |
| ·AtCPB T-DNA插入突变体植株具有增强的耐热性 | 第75-76页 |
| 5. AtCPA、AtCPB T-DNA插入突变体热激处理后的微丝变化 | 第76-79页 |
| 第四章 讨论 | 第79-83页 |
| 1. 拟南芥中可能存在两种AtCPB的异型体 | 第79-80页 |
| 2. AtCPA和AtCPB在体内具有不同的表达模式 | 第80-81页 |
| 3. 微丝变化与热激的关系 | 第81-83页 |
| 第五章 结论 | 第83-85页 |
| 参考文献 | 第85-93页 |
| 致谢 | 第93-94页 |
