| 摘要 | 第1-5页 |
| Abstract | 第5-9页 |
| 引言 | 第9-11页 |
| 1 P2X7R 基因研究现状 | 第11-23页 |
| ·P2X7R 的发现 | 第11-12页 |
| ·P2X7R 的组织分布 | 第12-13页 |
| ·P2X7R 蛋白结构特征 | 第13-16页 |
| ·P2X7R 的激动剂和拮抗剂 | 第16-18页 |
| ·激动剂 | 第16-17页 |
| ·拮抗剂 | 第17-18页 |
| ·P2X7R 的功能 | 第18-22页 |
| ·P2X7R 调节细胞死亡 | 第18-19页 |
| ·P2X7R 调节吞噬作用 | 第19-20页 |
| ·P2X7R 调节细胞杀死病原微生物 | 第20-21页 |
| ·P2X7R 在鱼类中研究进展 | 第21-22页 |
| ·小结 | 第22-23页 |
| 2 aP2X7R 基因的克隆及序列分析 | 第23-28页 |
| ·实验材料 | 第23-24页 |
| ·实验动物 | 第23页 |
| ·菌株、载体质粒、工具酶和试剂 | 第23页 |
| ·实验仪器 | 第23-24页 |
| ·实验方法 | 第24-25页 |
| ·总 RNA 抽提和 cDNA 合成 | 第24页 |
| ·aP2X7R 基因获得 | 第24页 |
| ·序列测定和分析 | 第24-25页 |
| ·结果与分析 | 第25页 |
| ·讨论 | 第25页 |
| ·小结 | 第25-28页 |
| 3 aP2X7R 基因的原核表达与抗血清制备 | 第28-33页 |
| ·实验材料 | 第28页 |
| ·实验方法 | 第28-30页 |
| ·原核表达载体构建 | 第28-29页 |
| ·诱导表达 | 第29页 |
| ·抗血清制备 | 第29页 |
| ·抗血清验证 | 第29-30页 |
| ·结果与分析 | 第30-31页 |
| ·原核表达载体构建 | 第30页 |
| ·重组质粒诱导表达 | 第30-31页 |
| ·抗血清验证 | 第31页 |
| ·讨论 | 第31-32页 |
| ·小结 | 第32-33页 |
| 4 鳗利斯顿氏菌感染和 aP2X2R 表达相关性 | 第33-40页 |
| ·实验材料 | 第33-34页 |
| ·试剂材料 | 第33页 |
| ·主要仪器 | 第33-34页 |
| ·实验方法 | 第34-36页 |
| ·组织样品准备 | 第34页 |
| ·细胞样品准备 | 第34-35页 |
| ·RT-qPCR | 第35页 |
| ·Western blot | 第35-36页 |
| ·结果与分析 | 第36-38页 |
| ·香鱼各组织和巨噬细胞 aP2X7R mRNA 在鳗利斯顿氏菌感染后表达上调 | 第36-38页 |
| ·香鱼巨噬细胞 aP2X7R 蛋白在鳗利斯顿氏菌感染后表达上调 | 第38页 |
| ·讨论 | 第38-39页 |
| ·小结 | 第39-40页 |
| 5 aP2X7R 参与香鱼巨噬细胞功能调控 | 第40-49页 |
| ·实验材料 | 第40页 |
| ·实验方法 | 第40-42页 |
| ·细胞培养 | 第40页 |
| ·RNA 干扰实验 | 第40-41页 |
| ·细胞死亡实验 | 第41页 |
| ·吞噬实验 | 第41-42页 |
| ·杀菌实验 | 第42页 |
| ·结果和分析 | 第42-47页 |
| ·aP2X7R 调节 ATP-诱导的巨噬细胞死亡 | 第42-44页 |
| ·aP2X7R 调节香鱼巨噬细胞吞噬和杀菌作用 | 第44-47页 |
| ·讨论 | 第47-48页 |
| ·小结 | 第48-49页 |
| 6 结语 | 第49-51页 |
| ·研究成果 | 第49页 |
| ·展望 | 第49-51页 |
| 参考文献 | 第51-59页 |
| 在学研究成果 | 第59-60页 |
| 致谢 | 第60页 |