摘要 | 第1-5页 |
Abstract | 第5-7页 |
缩写词及中英文对照 | 第7-9页 |
目录 | 第9-11页 |
第一章 前言 | 第11-19页 |
·食管癌研究现状 | 第11-13页 |
·分子靶向治疗及 HSP90 的结构与功能 | 第13-15页 |
·HSP90 抑制剂研究现状 | 第15-17页 |
·本论文研究内容 | 第17-19页 |
第二章 SNX-2112 抑制食管癌细胞增殖 | 第19-25页 |
·仪器材料 | 第19-21页 |
·主要仪器 | 第19页 |
·主要试剂 | 第19-20页 |
·细胞株 | 第20页 |
·主要试剂配制 | 第20-21页 |
·实验方法 | 第21-22页 |
·细胞培养 | 第21页 |
·细胞生长抑制实验 | 第21-22页 |
·统计学分析 | 第22页 |
·实验结果 | 第22-24页 |
·SNX-2112 抑制人食管癌细胞 ECA-109 增殖 | 第22-24页 |
·SNX-2112 抑制人食管癌 TE-1 细胞增殖 | 第24页 |
·讨论 | 第24-25页 |
第三章 SNX-2112 抑制食管癌细胞增殖的机制 | 第25-38页 |
·仪器与材料 | 第25-27页 |
·主要仪器 | 第25页 |
·主要试剂 | 第25-26页 |
·溶液配制 | 第26-27页 |
·实验方法 | 第27-29页 |
·细胞周期分布检测 | 第27-28页 |
·细胞凋亡检测 | 第28页 |
·Western-blot 检测蛋白表达水平 | 第28-29页 |
·统计学分析 | 第29页 |
·实验结果 | 第29-34页 |
·SNX-2112 诱导食管癌细胞发生 G2/M 期阻滞 | 第29-31页 |
·SNX-2112 下调食管癌细胞中 HSP90 客户蛋白的表达 | 第31-32页 |
·SNX-2112 诱导食管癌细胞凋亡的作用及机制 | 第32-33页 |
·SNX-2112 诱导食管癌细胞自噬水平的升高 | 第33-34页 |
·讨论 | 第34-38页 |
第四章 SNX-2112 影响内质网功能 | 第38-47页 |
·仪器与材料 | 第38-39页 |
·主要仪器 | 第38-39页 |
·主要试剂 | 第39页 |
·溶液配制 | 第39页 |
·实验方法 | 第39-40页 |
·免疫染色-激光共聚焦显微镜观察内质网的变化 | 第39-40页 |
·Western blot 检测内质网应激相关蛋白表达水平 | 第40页 |
·实验结果 | 第40-43页 |
·SNX-2112 改变食管癌细胞内质网功能 | 第40-41页 |
·SNX-2112 阻断内质网应激 | 第41-43页 |
·讨论 | 第43-47页 |
第五章 阻断内质网应激加剧 SNX-2112 诱导的食管癌细胞凋亡 | 第47-57页 |
·仪器与材料 | 第47-48页 |
·主要仪器 | 第47-48页 |
·主要试剂 | 第48页 |
·实验方法 | 第48-50页 |
·内质网应激抑制剂毒性测定 | 第48页 |
·内质网应激抑制剂对细胞周期分布的影响 | 第48-49页 |
·内质网应激抑制剂对细胞凋亡影响 | 第49页 |
·内质网应激诱导剂细胞抑制率检测 | 第49页 |
·内质网应激诱导剂对细胞周期分布的影响 | 第49-50页 |
·内质网应激诱导剂对细胞凋亡影响 | 第50页 |
·统计学分析 | 第50页 |
·实验结果 | 第50-55页 |
·TUDCA 和 4-PBA 对细胞存活率的影响 | 第50-51页 |
·TUDCA 和 4-PBA 对细胞周期分布的影响 | 第51-52页 |
·TUDCA 和 4-PBA 加剧 SNX-2112 诱导的细胞凋亡 | 第52-53页 |
·TG 和 TM 对细胞存活率的影响 | 第53-54页 |
·TG 和 TM 缓解 SNX-2112 诱导的细胞周期阻滞 | 第54页 |
·TG 和 TM 缓解 SNX-2112 诱导的细胞凋亡 | 第54-55页 |
·讨论 | 第55-57页 |
第六章 全文总结 | 第57-59页 |
·本论文主要结论 | 第57-58页 |
·本论文创新处 | 第58页 |
·尚需完善和进一步开展研究之处 | 第58-59页 |
参考文献 | 第59-63页 |
硕士期间发表论文 | 第63-64页 |
致谢 | 第64页 |