| 致谢 | 第1-7页 |
| 摘要 | 第7-9页 |
| Abstract | 第9-14页 |
| 1 绪论 | 第14-62页 |
| ·概述 | 第14-15页 |
| ·表面等离子体子共振的原理 | 第15-31页 |
| ·等离子体子——Plasmon | 第15-16页 |
| ·表面等离子体子——Surface Plasmon(SP) | 第16-21页 |
| ·表面等离子体子共振——Surface Plasmon Resonance(SPR) | 第21-22页 |
| ·表面等离子体子共振传感器 | 第22-31页 |
| ·表面等离子体子共振传感器的应用 | 第31-37页 |
| ·在蛋白质组学方面的应用 | 第32-37页 |
| ·表面等离子体子共振传感器的研究现状 | 第37-46页 |
| ·SPR传感器的检测缺陷 | 第46-47页 |
| ·本论文的研究意义和研究内容 | 第47-50页 |
| 参考文献 | 第50-62页 |
| 2 表面等离子体子共振生物传感器检测青霉素的方法研究 | 第62-82页 |
| ·实验部分 | 第64-69页 |
| ·实验试剂 | 第64-65页 |
| ·检测装置 | 第65-66页 |
| ·实验步骤 | 第66-69页 |
| ·结果与讨论 | 第69-76页 |
| ·ESI质谱检测青霉胺和青霉醛 | 第69-70页 |
| ·UV-Vis分光光度计检测青霉胺——胶体金复合物 | 第70-73页 |
| ·SPR生物传感器检测青霉素 | 第73-75页 |
| ·干扰检测 | 第75页 |
| ·实际样品检测 | 第75-76页 |
| ·结论 | 第76-78页 |
| 参考文献 | 第78-82页 |
| 3 表面等离子体子共振生物传感器检测Caspase-3基因的碱基错配研究 | 第82-104页 |
| ·实验部分 | 第86-90页 |
| ·实验试剂 | 第86-87页 |
| ·反转录聚合酶链式反应(Reverse Transcription-PCR,RT-PCR) | 第87-88页 |
| ·实验装置 | 第88页 |
| ·流通池的制作 | 第88-89页 |
| ·制备自组装单层膜 | 第89-90页 |
| ·优化Taq DNA聚合酶与dsDNA寡核苷酸片段的结合条件 | 第90页 |
| ·基于SPR生物传感器检测含有碱基错配的ssDNA寡核苷酸 | 第90页 |
| ·结果与讨论 | 第90-97页 |
| ·凋亡酶caspase-3 DNA序列RT-PCR扩增产物 | 第90-91页 |
| ·优化Taq DNA聚合酶的反应条件 | 第91-94页 |
| ·基于SPR生物传感器直接检测分析碱基错配 | 第94-96页 |
| ·基于SPR生物传感器Taq DNA聚合酶放大方法检测分析碱基错配 | 第96-97页 |
| ·结论 | 第97-100页 |
| 参考文献 | 第100-104页 |
| 4. 表面等离子体子共振生物传感器检测肝癌细胞HepG2浓度的研究 | 第104-126页 |
| ·实验部分 | 第107-111页 |
| ·实验试剂 | 第107页 |
| ·实验装置 | 第107-108页 |
| ·流通池制备 | 第108-109页 |
| ·流速的选择 | 第109页 |
| ·细胞培养 | 第109-110页 |
| ·Western Blot | 第110页 |
| ·制备功能化表面 | 第110-111页 |
| ·建立HepG2和L02混合细胞模型 | 第111页 |
| ·表面等离子体子共振成像检测 | 第111页 |
| ·结果与讨论 | 第111-120页 |
| ·Western Blot验证HepG2细胞表达CEA | 第111-112页 |
| ·优化癌胚抗原抗体的自组装浓度 | 第112-113页 |
| ·SPR金膜功能化全过程 | 第113页 |
| ·流通池的富集作用 | 第113-115页 |
| ·流速对捕获结果的影响 | 第115-117页 |
| ·SPR传感器检测HepG2细胞的浓度 | 第117-119页 |
| ·SPR成像装置检测HepG2和L02混合细胞的浓度 | 第119-120页 |
| ·结论 | 第120-122页 |
| 参考文献 | 第122-126页 |
| 攻读博士学位期间发表或者录用的论文目录 | 第126页 |
