| 摘要 | 第1-7页 |
| Abstract | 第7-12页 |
| 第一章 文献综述 | 第12-29页 |
| 1 橘红色闭壳肌虾夷扇贝的发现及选育 | 第12-16页 |
| ·橘红色闭壳肌虾夷扇贝的选择与繁育 | 第12-13页 |
| ·虾夷扇贝橘红色闭壳肌中主要色素的分离提纯与结构鉴定 | 第13-15页 |
| ·虾夷扇贝类胡萝卜素的种类组成和累积变化规律 | 第15-16页 |
| ·累积类胡萝卜素对虾夷扇贝闭壳肌的化学成分的影响 | 第16页 |
| 2 类胡萝卜素的生物代谢途径 | 第16-21页 |
| ·类胡萝卜素的种类、分布与功能 | 第16-18页 |
| ·类胡萝卜素在生物体内的合成与代谢 | 第18-20页 |
| ·类胡萝卜素在动物体内的转运 | 第20-21页 |
| 3 筛选差异性表达基因的方法 | 第21-23页 |
| 4 抑制性差减杂交技术的原理 | 第23-25页 |
| 5 清道夫受体相关研究 | 第25-28页 |
| ·清道夫受体家族 | 第25-26页 |
| ·清道夫受体的功能 | 第26-27页 |
| ·清道夫受体在类胡萝卜素转运中的作用 | 第27-28页 |
| 6 本研究的目的与意义 | 第28-29页 |
| 第二章 利用抑制性差减杂交技术筛选差异表达基因 | 第29-53页 |
| 1 实验材料 | 第29-30页 |
| ·实验用扇贝及样品处理 | 第29页 |
| ·主要化学试剂 | 第29页 |
| ·主要仪器设备 | 第29-30页 |
| 2 实验方法 | 第30-40页 |
| ·虾夷扇贝闭壳肌组织RNA 的提取 | 第30-31页 |
| ·虾夷扇贝闭壳肌mRNA 的纯化 | 第31-32页 |
| ·突变体与对照组虾夷扇贝闭壳肌组织的抑制性差减杂交 | 第32-39页 |
| ·cDNA 第一链的合成 | 第32-33页 |
| ·cDNA 第二链的合成 | 第33页 |
| ·RsaⅠ酶切 | 第33-34页 |
| ·接头连接 | 第34-35页 |
| ·连接效率检测 | 第35-36页 |
| ·第一次杂交 | 第36页 |
| ·第二次杂交 | 第36-37页 |
| ·PCR 扩增 | 第37-39页 |
| ·差减效率检测 | 第39页 |
| ·差异片段的测序与分析 | 第39-40页 |
| 3 实验结果 | 第40-49页 |
| ·虾夷扇贝闭壳肌组织RNA 的质量检测 | 第40-41页 |
| ·虾夷扇贝闭壳肌组织mRNA 的质量检测 | 第41页 |
| ·接头连接效率的检测 | 第41-43页 |
| ·抑制性差减杂交产物的检测 | 第43页 |
| ·cDNA 差减文库的构建及差减效率检测 | 第43-46页 |
| ·差减杂交产物的测序及分析 | 第46-49页 |
| 4 讨论 | 第49-53页 |
| ·抑制性差减杂交技术的评价与展望 | 第49-50页 |
| ·筛选所得部分基因的功能 | 第50-53页 |
| 第三章 清道夫受体组织表达规律的研究 | 第53-61页 |
| 1 实验材料 | 第53-54页 |
| ·实验用扇贝及样品处理 | 第53页 |
| ·主要化学试剂 | 第53-54页 |
| ·主要仪器设备 | 第54页 |
| 2 实验方法 | 第54-56页 |
| ·虾夷扇贝各组织RNA 的提取 | 第54页 |
| ·虾夷扇贝各组织cDNA 的合成 | 第54-55页 |
| ·荧光实时定量PCR 检测目的基因的表达 | 第55-56页 |
| 3 实验结果 | 第56-58页 |
| 4 讨论 | 第58-61页 |
| 小结 | 第61-62页 |
| 参考文献 | 第62-69页 |
| 附录 | 第69-77页 |
| 致谢 | 第77-78页 |
| 个人简历 | 第78页 |
| 发表的学术论文 | 第78页 |