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刺梨高含量AsA的积累机制及其关键酶基因的克隆与表达

缩略语表第1-13页
中文摘要第13-16页
ABSTRACT第16-19页
第一章 前人研究进展与本课题立论依据第19-40页
 一、前人研究进展第19-38页
  1 维生素C的发现、化学结构以及对人类的意义第19-20页
  2 高等植物中AsA的功能、合成、运输和代谢研究进展第20-31页
   ·高等植物中AsA的生理功能第20-24页
     ·AsA在植物体的抗氧化系统中起着重要的作用第20页
     ·AsA在光合作用和光合保护中起重要作用第20-21页
     ·AsA在细胞壁代谢和细胞膨大中的作用第21页
     ·AsA对细胞分裂的影响第21-22页
     ·AsA可作为一系列重要酶反应的辅因子(Cofactor)第22-23页
     ·AsA在植物信号传递过程中起重要作用第23-24页
   ·高等植物中AsA的合成途径第24-26页
     ·碳链倒位途径第24页
     ·邻酮醛糖途径第24-25页
     ·L-半乳糖途径第25-26页
     ·可能的交替途径:糖醛酸转变途径第26页
   ·AsA在植物细胞内的运输和代谢第26-30页
     ·植物细胞内AsA的跨膜运输第26-29页
     ·AsA在植物细胞内的氧化还原过程第29页
     ·植物体内AsA的分解第29-30页
   ·影响AsA积累的因素及调控措施第30-31页
     ·影响AsA积累的因素第30-31页
     ·调控措施第31页
  3 调控高等植物AsA合成及代谢循环的相关酶研究进展第31-35页
   ·AsA合成相关酶第31-34页
   ·AsA代谢循环酶第34-35页
  4 果树合成和积累AsA的研究进展第35-38页
   ·果树合成和积累AsA的相关研究进展第35-36页
   ·刺梨及刺梨积累高含量AsA的相关研究第36-38页
 二、立论依据及研究内容第38-40页
   ·立论依据与研究目的及意义第38页
   ·研究思路及主要研究内容第38-40页
第二章 刺梨果实合成和积累高含量AsA的一般特点、生理机制及可能途径第40-52页
 1 材料与方法第41-44页
   ·实验材料第41-42页
     ·植物材料第41页
     ·主要试剂第41-42页
   ·实验方法第42-44页
     ·果实鲜重及干重测定第42页
     ·水溶性总糖、还原糖及蔗糖含量的测定第42页
     ·前体物喂饲(precursor feeding)第42页
     ·AsA和DHA含量的测定第42页
     ·半乳糖内酯脱氢酶(GalLDH)活性测定第42-43页
     ·不同底物和不同抑制剂对GalLDH活性的影响第43页
     ·AAO、AAP以及MDAR、DHAR活性测定第43-44页
 2 结果与分析第44-50页
   ·刺梨果实的生长发育规律第44页
   ·刺梨果实发育过程中AsA的积累规律第44-45页
   ·刺梨果实发育过程中碳水化合物含量的变化第45-46页
   ·刺梨果实发育过程中GalLDH活性的变化及其与AsA积累的关系第46-47页
   ·不同底物和不同抑制剂对GalLDH活性的影响第47-48页
   ·刺梨果实发育过程中AAO、AAP以及MDAR、DHAR活性的变化第48-49页
   ·不同前体物在刺梨果实AsA合成中的效率及刺梨果实合成AsA的可能途径第49-50页
 3 讨论第50-52页
第三章 刺梨叶积累AsA的一般特点及其衰老过程中AsA含量和部分抗氧化酶活性的变化第52-60页
 1 材料与方法第53页
   ·实验材料及取样方法第53页
   ·实验方法第53页
     ·叶片质膜透性测定第53页
     ·叶片色素测定第53页
     ·O_(2.)~-产生速率测定第53页
     ·POD、CAT、丙二醛(MDA)和可溶性蛋白质含量测定第53页
     ·AsA和脱氢抗坏血酸(DHA)含量测定第53页
     ·半乳糖内酯脱氢酶(GalLDH)活性测定第53页
     ·前体物喂饲(precursor feeding)第53页
 2 结果与分析第53-58页
   ·刺梨叶片积累AsA的一般特点第54页
   ·不同喂饲底物在刺梨叶片积累AsA中的效率第54-55页
   ·刺梨叶衰老过程中光合色素含量的变化第55-56页
   ·刺梨叶衰老过程中O_(2.)~-产生速率、MDA含量和细胞质膜透性的变化第56页
   ·刺梨叶衰老过程中AsA和DHA含量的变化第56-57页
   ·刺梨叶衰老过程中POD、CAT及可溶性蛋白质含量的变化第57-58页
 3 讨论第58-60页
第四章 刺梨L-半乳糖内酯脱氢酶(GalLDH)基因的克隆与分析第60-74页
 1 材料与方法第61-64页
   ·实验材料第61页
   ·实验方法第61-64页
     ·RNA提取及质量检测第61页
     ·RT-PCR第61-62页
     ·3′-和5′-快速扩增cDNA末端(RACE)第62页
     ·GalLDH基因全长cDNA序列的分离第62页
     ·特异带的回收、克隆和测序第62页
     ·大肠杆菌感受态细胞的制备及DNA的转化方法第62-63页
     ·质粒提取方法第63页
     ·刺梨基因组DNA提取第63页
     ·刺梨GalLDH基因的Southern blot分析第63-64页
 2 结果与分析第64-72页
   ·RNA质量第64页
   ·刺梨GalLDH基因的RT-PCR及RACE扩增第64-65页
   ·GalLDH基因全长cDNA序列的分离及验证第65页
   ·刺梨GalLDH基因全长cDNA及其氨基酸序列分析第65-67页
   ·不同植物GalLDH基因氨基酸序列比较分析第67-71页
   ·刺梨GalLDH基因的Southern blot分析第71-72页
 3 讨论第72-74页
第五章 刺梨GalLDH基因在Escherichia coli中的表达第74-79页
 1 材料与方法第74-76页
   ·表达载体和试剂第74页
   ·实验方法第74-76页
     ·GalLDH原核表达载体构建第74-75页
     ·载体转化和诱导表达第75页
     ·SDS-PAGE检测第75页
     ·GalLDH活性测定第75-76页
 2 结果与分析第76-78页
   ·刺梨GalLDH原核表达载体的验证第76-77页
   ·刺梨GalLDH基因在E.coli中的表达第77-78页
 3 讨论第78-79页
第六章 刺梨L-半乳糖内酯脱氢酶(GalLDH)基因的时空表达及其与AsA积累的关系第79-90页
 1 材料与方法第80-82页
   ·实验材料及取样方法第80页
   ·实验方法第80-82页
     ·刺梨RNA及基因组DNA提取第80页
     ·GalLDH的Northern blot分析第80-81页
     ·RT-PCR第81页
     ·GalLDH表达的半定量RT-PCR(Semiquantitative RT-PCR)分析第81页
     ·GalLDH酶活性测定第81页
     ·AsA和DHA含量测定第81页
     ·刺梨ACO基因的克隆及在果实中的表达分析第81-82页
 2 结果与分析第82-88页
   ·刺梨GalLDH在不同器官的表达及其与AsA积累的关系第82-83页
   ·GalLDH在刺梨果实不同发育时期的表达及其与AsA积累的关系第83-86页
     ·Northern blot分析第83-84页
     ·半定量RT-PCR分析第84-86页
   ·刺梨ACO基因的克隆、在果实中的表达及其与GalLDH表达的关系第86-88页
     ·刺梨ACO基因的克隆第86页
     ·刺梨ACO基因在果实发育过程中的表达及其与GalLDH表达的关系第86-88页
 3 讨论第88-90页
第七章 刺梨L-半乳糖内酯脱氢酶(GalLDH)基因遗传转化草莓的初步研究第90-97页
 1 材料与方法第91-93页
   ·试验材料第91页
     ·植物材料及繁殖第91页
     ·载体、农杆菌菌株及实验试剂第91页
   ·实验方法第91-93页
     ·表达载体构建第91-92页
     ·农杆菌感受态细胞制备与转化第92页
     ·草莓叶盘的预培养第92页
     ·草莓叶对潮霉素B的敏感性试验第92-93页
     ·草莓的遗传转化第93页
 2 结果与分析第93-96页
   ·刺梨GalLDH基因植物表达载体构建及验证第93页
   ·草莓叶对潮霉素的敏感性第93-94页
   ·刺梨GalLDH基因遗传转化草莓的初步研究第94-96页
 3 讨论第96-97页
参考文献第97-107页
在读期间发表论文情况第107页

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