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根瘤菌1201菌株合成多聚羟基烷酸和多糖的研究

中文摘要第1-9页
英文摘要第9-11页
前言第11-13页
 1. 研究目的和意义第11页
 2. 技术路线第11-13页
第一部分 文献综述第13-28页
 1. 多聚羟基烷酸的研究进展第13-25页
  1.1 多聚羟基烷酸的开发与利用第13页
  1.2 多聚羟基烷酸的生物学特性第13-14页
  1.3 合成多聚羟基烷酸的主要微生物第14-15页
  1.4 发酵工艺与生产第15-17页
  1.5 下游提取与加工第17-18页
  1.6 PHAs的检测和分析第18-19页
  1.7 多聚羟基烷酸的分子结构与性质第19-20页
  1.8 合成多聚羟基烷酸的代谢途径及调节控制第20-22页
  1.9 多聚羟基烷酸的应用与前景展望第22-25页
 2. 多糖的研究进展第25-28页
  2.1 多糖免疫调节作用的研究进展第25-26页
  2.2 EPS的分离纯化及结构研究第26-28页
第二部分 根瘤菌1201菌株生长条件优化的研究第28-34页
 1. 材料与方法第28-30页
  1.1 主要材料第28页
   1.1.1 供试菌株第28页
   1.1.2 主要试剂第28页
   1.1.3 培养基第28页
   1.1.4 仪器第28页
  1.2 方法第28-30页
   1.2.1 培养基成分与培养条件对 Rhizobium sp.1201的影响第28-29页
   1.2.3 分批发酵动力学参数测定第29-30页
 2. 结果与分析第30-33页
  2.1 最适培养基成分及生长条件的优化第30-33页
  2.2 发酵动力学参数第33页
 3. 讨论与结论第33-34页
第三部分 根瘤菌1201合成多聚羟基烷酸的研究第34-53页
 1. 材料与方法第34-39页
  1.1 主要材料第34页
   1.1.1 供试菌株第34页
   1.1.2 主要试剂第34页
   1.1.3 培养基第34页
   1.1.4 主要仪器第34页
  1.2 方法第34-39页
   1.2.1 合成 PHB的分批发酵第34-35页
   1.2.2 多聚羟基烷酸的诱导合成第35-36页
   1.2.3 提取根瘤菌1201细胞内 PHB方法的研究第36-38页
   1.2.4 不同萃取方式提取根瘤菌1201细胞内 PHB的研究第38-39页
   1.2.5 PHAs的分子量测定:乌氏粘度计法第39页
 2. 结果与分析第39-51页
  2.1 多聚羟基丁酸合成与菌体生长关系第39-40页
  2.2 底物诱导合成多聚羟基烷酸第40-43页
   2.2.1 烷酸盐诱导合成多聚羟基烷酸第40-42页
   2.2.2 诱导合成羟基丁酸和羟基辛酸共聚体的最优条件第42-43页
  2.3 不同方法提取根瘤菌1201细胞内 PHB第43-49页
   2.3.1 有机溶剂萃取 PHB法条件的筛选第43-45页
   2.3.2 水相提取 PHB结果比较第45-49页
  2.4 萃取方式的比较第49-50页
  2.5 PHB、P(HB-HO)的分子量大小第50-51页
 3. 讨论与结论第51-53页
第四部分 根瘤菌1201菌株胞外多糖的研究第53-59页
 1. 材料与方法第53-55页
  1.1 主要材料第53页
   1.1.1 供试菌株第53页
   1.1.2 试剂第53页
   1.1.3 仪器设备第53页
   1.1.4 培养基第53页
  1.2 方法第53-55页
   1.2.1 合成多糖的分批发酵第53页
   1.2.2 发酵液与菌体分离方法比较研究第53-54页
   1.2.3 粗多糖的制备第54页
   1.2.4 粗多糖单糖成分测定第54页
   1.2.5 根瘤菌1201胞外多糖对小鼠非特异性免疫功能的影响第54-55页
 2. 结果与分析第55-58页
  2.1 多糖合成与菌体生长的关系第55页
  2.2 最佳固液分离方法的筛选第55-58页
  2.3 粗多糖单糖成分第58页
  2.4 根瘤菌1201胞外多糖对小鼠非特异性免疫功能的增强作用第58页
 3. 讨论与结论第58-59页
结束语第59-60页
参考文献第60-66页
致谢第66页

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