中文摘要 | 第1-9页 |
英文摘要 | 第9-11页 |
前言 | 第11-13页 |
1. 研究目的和意义 | 第11页 |
2. 技术路线 | 第11-13页 |
第一部分 文献综述 | 第13-28页 |
1. 多聚羟基烷酸的研究进展 | 第13-25页 |
1.1 多聚羟基烷酸的开发与利用 | 第13页 |
1.2 多聚羟基烷酸的生物学特性 | 第13-14页 |
1.3 合成多聚羟基烷酸的主要微生物 | 第14-15页 |
1.4 发酵工艺与生产 | 第15-17页 |
1.5 下游提取与加工 | 第17-18页 |
1.6 PHAs的检测和分析 | 第18-19页 |
1.7 多聚羟基烷酸的分子结构与性质 | 第19-20页 |
1.8 合成多聚羟基烷酸的代谢途径及调节控制 | 第20-22页 |
1.9 多聚羟基烷酸的应用与前景展望 | 第22-25页 |
2. 多糖的研究进展 | 第25-28页 |
2.1 多糖免疫调节作用的研究进展 | 第25-26页 |
2.2 EPS的分离纯化及结构研究 | 第26-28页 |
第二部分 根瘤菌1201菌株生长条件优化的研究 | 第28-34页 |
1. 材料与方法 | 第28-30页 |
1.1 主要材料 | 第28页 |
1.1.1 供试菌株 | 第28页 |
1.1.2 主要试剂 | 第28页 |
1.1.3 培养基 | 第28页 |
1.1.4 仪器 | 第28页 |
1.2 方法 | 第28-30页 |
1.2.1 培养基成分与培养条件对 Rhizobium sp.1201的影响 | 第28-29页 |
1.2.3 分批发酵动力学参数测定 | 第29-30页 |
2. 结果与分析 | 第30-33页 |
2.1 最适培养基成分及生长条件的优化 | 第30-33页 |
2.2 发酵动力学参数 | 第33页 |
3. 讨论与结论 | 第33-34页 |
第三部分 根瘤菌1201合成多聚羟基烷酸的研究 | 第34-53页 |
1. 材料与方法 | 第34-39页 |
1.1 主要材料 | 第34页 |
1.1.1 供试菌株 | 第34页 |
1.1.2 主要试剂 | 第34页 |
1.1.3 培养基 | 第34页 |
1.1.4 主要仪器 | 第34页 |
1.2 方法 | 第34-39页 |
1.2.1 合成 PHB的分批发酵 | 第34-35页 |
1.2.2 多聚羟基烷酸的诱导合成 | 第35-36页 |
1.2.3 提取根瘤菌1201细胞内 PHB方法的研究 | 第36-38页 |
1.2.4 不同萃取方式提取根瘤菌1201细胞内 PHB的研究 | 第38-39页 |
1.2.5 PHAs的分子量测定:乌氏粘度计法 | 第39页 |
2. 结果与分析 | 第39-51页 |
2.1 多聚羟基丁酸合成与菌体生长关系 | 第39-40页 |
2.2 底物诱导合成多聚羟基烷酸 | 第40-43页 |
2.2.1 烷酸盐诱导合成多聚羟基烷酸 | 第40-42页 |
2.2.2 诱导合成羟基丁酸和羟基辛酸共聚体的最优条件 | 第42-43页 |
2.3 不同方法提取根瘤菌1201细胞内 PHB | 第43-49页 |
2.3.1 有机溶剂萃取 PHB法条件的筛选 | 第43-45页 |
2.3.2 水相提取 PHB结果比较 | 第45-49页 |
2.4 萃取方式的比较 | 第49-50页 |
2.5 PHB、P(HB-HO)的分子量大小 | 第50-51页 |
3. 讨论与结论 | 第51-53页 |
第四部分 根瘤菌1201菌株胞外多糖的研究 | 第53-59页 |
1. 材料与方法 | 第53-55页 |
1.1 主要材料 | 第53页 |
1.1.1 供试菌株 | 第53页 |
1.1.2 试剂 | 第53页 |
1.1.3 仪器设备 | 第53页 |
1.1.4 培养基 | 第53页 |
1.2 方法 | 第53-55页 |
1.2.1 合成多糖的分批发酵 | 第53页 |
1.2.2 发酵液与菌体分离方法比较研究 | 第53-54页 |
1.2.3 粗多糖的制备 | 第54页 |
1.2.4 粗多糖单糖成分测定 | 第54页 |
1.2.5 根瘤菌1201胞外多糖对小鼠非特异性免疫功能的影响 | 第54-55页 |
2. 结果与分析 | 第55-58页 |
2.1 多糖合成与菌体生长的关系 | 第55页 |
2.2 最佳固液分离方法的筛选 | 第55-58页 |
2.3 粗多糖单糖成分 | 第58页 |
2.4 根瘤菌1201胞外多糖对小鼠非特异性免疫功能的增强作用 | 第58页 |
3. 讨论与结论 | 第58-59页 |
结束语 | 第59-60页 |
参考文献 | 第60-66页 |
致谢 | 第66页 |