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AtSDG26基因在植物抗逆中的功能研究

摘要第1-5页
Abstract第5-11页
第一章 文献综述第11-18页
 1 研究背景第11-12页
   ·组蛋白的修饰第11-12页
   ·组蛋白甲基化修饰与植物抗逆第12页
 2 非生物胁迫对植物的影响第12-16页
   ·胁迫对细胞膜的影响第13页
   ·胁迫对水分代谢的影响第13-14页
   ·胁迫与渗透调节第14-15页
   ·胁迫对抗氧化防御系统的影响第15页
   ·胁迫诱导蛋白的合成和基因的表达第15-16页
 3 研究目的和意义第16页
 4 主要研究内容和技术路线第16-18页
   ·主要研究内容第16-17页
   ·试验的技术路线第17-18页
第二章 拟南芥突变体sdg26纯合子筛选和SDG26基因启动子的分析第18-24页
 1 试验试剂和仪器第18页
 2 试验方法第18-20页
   ·引物设计第18-19页
     ·纯合子筛选引物设计第18-19页
     ·SDG26基因的表达检测引物第19页
   ·突变体纯合子植株检测方法第19-20页
     ·CTAB法提取拟南芥植株总DNA第19页
     ·材料的总RNA提取第19-20页
     ·PCR反应第20页
     ·电泳检测PCR产物第20页
 3 检测结果第20-22页
   ·纯合子筛选结果第20-21页
   ·SDG26基因表达检测结果第21-22页
 4 SDG26基因的启动子序列的分析第22页
 5 小结第22-24页
第三章 拟南芥突变体sdg26的表型观察第24-28页
 1 试验试剂和仪器第24页
 2 试验材料和处理方法第24页
   ·试验材料第24页
   ·材料处理方法第24页
 3 拟南芥突变体sdg26的形态观察结果第24-27页
   ·植株大小和莲座叶的比较第24-25页
   ·花和种子的形态比较第25-26页
   ·莲座叶、株高和种子干重统计第26页
   ·茎的石蜡切片观察和比较第26-27页
 4 小结第27-28页
第四章 拟南芥突变体sdg26在干旱胁迫下的生理生化变化第28-38页
 1 试验材料和仪器第28页
   ·试验材料第28页
   ·试验仪器第28页
 2 试验方法第28-32页
   ·游离脯氨酸含量的测定第28-30页
   ·丙二醛(MDA)含量的测定第30页
   ·超氧化物歧化酶(SOD)活性的测定第30-31页
   ·组织含水量的测定第31页
   ·可溶性糖的测定第31-32页
 3 试验结果第32-36页
   ·干旱胁迫下拟南芥叶片内脯氨酸变化第32页
   ·干旱胁迫对叶片中丙二醛(MDA)含量变化第32-33页
   ·干旱胁迫对超氧化物歧化酶(SOD)活性的影响第33-34页
   ·干旱胁迫下叶片含水量的变化第34-35页
   ·干旱胁迫对植物体内可溶性糖含量影响的作用结果第35页
   ·干旱胁迫对拟南芥突变体sdg26形态的影响第35-36页
 4 小结第36-38页
第五章 盐胁迫下拟南芥突变体sdg26的生理生化的研究第38-45页
 1 试验试剂和材料第38页
   ·试验试剂第38页
   ·试验材料第38页
 2 试验方法第38页
 3 试验结果第38-43页
   ·NaCl对突变体sdg26种子萌芽率的影响第38-39页
   ·NaCl胁迫下拟南芥根形态观测与统计第39-41页
     ·在不同NaCl浓度下拟南芥根的生长情况第39-40页
     ·在100mmol/LNaCl胁迫下拟南芥根长统计第40-41页
   ·盐处理后的拟南芥突变体sdg26与Col的生长状况第41页
   ·生理生化指标的测定第41-43页
     ·过氧化物歧化酶(SOD)的活性测定结果第41-42页
     ·丙二醛(MDA)的含量测定结果第42页
     ·脯氨酸含量的测定结果第42-43页
 4 小结第43-45页
第六章 试验总结和研究创新点第45-47页
 1 试验总结第45-46页
 2 研究创新点第46-47页
参考文献第47-51页
致谢第51-52页
作者简介第52页

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