摘要 | 第1-5页 |
Abstract | 第5-11页 |
第一章 文献综述 | 第11-18页 |
1 研究背景 | 第11-12页 |
·组蛋白的修饰 | 第11-12页 |
·组蛋白甲基化修饰与植物抗逆 | 第12页 |
2 非生物胁迫对植物的影响 | 第12-16页 |
·胁迫对细胞膜的影响 | 第13页 |
·胁迫对水分代谢的影响 | 第13-14页 |
·胁迫与渗透调节 | 第14-15页 |
·胁迫对抗氧化防御系统的影响 | 第15页 |
·胁迫诱导蛋白的合成和基因的表达 | 第15-16页 |
3 研究目的和意义 | 第16页 |
4 主要研究内容和技术路线 | 第16-18页 |
·主要研究内容 | 第16-17页 |
·试验的技术路线 | 第17-18页 |
第二章 拟南芥突变体sdg26纯合子筛选和SDG26基因启动子的分析 | 第18-24页 |
1 试验试剂和仪器 | 第18页 |
2 试验方法 | 第18-20页 |
·引物设计 | 第18-19页 |
·纯合子筛选引物设计 | 第18-19页 |
·SDG26基因的表达检测引物 | 第19页 |
·突变体纯合子植株检测方法 | 第19-20页 |
·CTAB法提取拟南芥植株总DNA | 第19页 |
·材料的总RNA提取 | 第19-20页 |
·PCR反应 | 第20页 |
·电泳检测PCR产物 | 第20页 |
3 检测结果 | 第20-22页 |
·纯合子筛选结果 | 第20-21页 |
·SDG26基因表达检测结果 | 第21-22页 |
4 SDG26基因的启动子序列的分析 | 第22页 |
5 小结 | 第22-24页 |
第三章 拟南芥突变体sdg26的表型观察 | 第24-28页 |
1 试验试剂和仪器 | 第24页 |
2 试验材料和处理方法 | 第24页 |
·试验材料 | 第24页 |
·材料处理方法 | 第24页 |
3 拟南芥突变体sdg26的形态观察结果 | 第24-27页 |
·植株大小和莲座叶的比较 | 第24-25页 |
·花和种子的形态比较 | 第25-26页 |
·莲座叶、株高和种子干重统计 | 第26页 |
·茎的石蜡切片观察和比较 | 第26-27页 |
4 小结 | 第27-28页 |
第四章 拟南芥突变体sdg26在干旱胁迫下的生理生化变化 | 第28-38页 |
1 试验材料和仪器 | 第28页 |
·试验材料 | 第28页 |
·试验仪器 | 第28页 |
2 试验方法 | 第28-32页 |
·游离脯氨酸含量的测定 | 第28-30页 |
·丙二醛(MDA)含量的测定 | 第30页 |
·超氧化物歧化酶(SOD)活性的测定 | 第30-31页 |
·组织含水量的测定 | 第31页 |
·可溶性糖的测定 | 第31-32页 |
3 试验结果 | 第32-36页 |
·干旱胁迫下拟南芥叶片内脯氨酸变化 | 第32页 |
·干旱胁迫对叶片中丙二醛(MDA)含量变化 | 第32-33页 |
·干旱胁迫对超氧化物歧化酶(SOD)活性的影响 | 第33-34页 |
·干旱胁迫下叶片含水量的变化 | 第34-35页 |
·干旱胁迫对植物体内可溶性糖含量影响的作用结果 | 第35页 |
·干旱胁迫对拟南芥突变体sdg26形态的影响 | 第35-36页 |
4 小结 | 第36-38页 |
第五章 盐胁迫下拟南芥突变体sdg26的生理生化的研究 | 第38-45页 |
1 试验试剂和材料 | 第38页 |
·试验试剂 | 第38页 |
·试验材料 | 第38页 |
2 试验方法 | 第38页 |
3 试验结果 | 第38-43页 |
·NaCl对突变体sdg26种子萌芽率的影响 | 第38-39页 |
·NaCl胁迫下拟南芥根形态观测与统计 | 第39-41页 |
·在不同NaCl浓度下拟南芥根的生长情况 | 第39-40页 |
·在100mmol/LNaCl胁迫下拟南芥根长统计 | 第40-41页 |
·盐处理后的拟南芥突变体sdg26与Col的生长状况 | 第41页 |
·生理生化指标的测定 | 第41-43页 |
·过氧化物歧化酶(SOD)的活性测定结果 | 第41-42页 |
·丙二醛(MDA)的含量测定结果 | 第42页 |
·脯氨酸含量的测定结果 | 第42-43页 |
4 小结 | 第43-45页 |
第六章 试验总结和研究创新点 | 第45-47页 |
1 试验总结 | 第45-46页 |
2 研究创新点 | 第46-47页 |
参考文献 | 第47-51页 |
致谢 | 第51-52页 |
作者简介 | 第52页 |