| 摘要 | 第1-7页 |
| ABSTRACT | 第7-16页 |
| 英文缩略词表 | 第16-17页 |
| 第一部分 MK-801重复处理围产期或成年期大鼠建立的精神分裂症模型的行为学评价 | 第17-33页 |
| 1 前言 | 第17-18页 |
| 2 材料与方法 | 第18-21页 |
| ·实验动物 | 第18-19页 |
| ·实验药品、试剂和器材 | 第19页 |
| ·试验方法 | 第19-21页 |
| ·自发活动(Locomotion) | 第19-20页 |
| ·强迫游泳(Forced Swimming test,FST) | 第20页 |
| ·社会交往测试(Social Interaction test) | 第20-21页 |
| ·Morris水迷宫(Morris Water Maze test,MWM) | 第21页 |
| ·统计学处理 | 第21页 |
| 3 结果 | 第21-25页 |
| ·两种SZ模型大鼠自发活动的比较 | 第21-22页 |
| ·两种SZ模型大鼠强迫游泳行为的比较 | 第22页 |
| ·两种SZ模型大鼠社会交往能力的比较 | 第22-24页 |
| ·两种SZ模型大鼠空间学习和参考记忆能力的比较 | 第24-25页 |
| 4 讨论 | 第25-31页 |
| ·建立啮齿类SZ动物模型的依据和MK-801的剂量选择 | 第25-26页 |
| ·自发活动 | 第26-27页 |
| ·强迫游泳 | 第27-28页 |
| ·社会交往测试 | 第28-30页 |
| ·Morris水迷宫测试 | 第30-31页 |
| 5 小结 | 第31-33页 |
| 第二部分 MK-801重复处理建立的两种SZ模型大鼠脑组织PV、GAD67和KCC2表达的比较 | 第33-46页 |
| 1 前言 | 第33-34页 |
| 2 材料与方法 | 第34-38页 |
| ·实验动物 | 第35页 |
| ·实验药品、试剂和器材 | 第35页 |
| ·试验方法 | 第35-38页 |
| ·免疫组织化学(Immunohistochemical analysis) | 第35-37页 |
| ·组织灌注和脑片制备 | 第35-36页 |
| ·抗原检测 | 第36页 |
| ·免疫组织化学结果的观察与图像分析 | 第36-37页 |
| ·免疫印迹(Western blotting) | 第37-38页 |
| ·组织取材 | 第37页 |
| ·蛋白质的提取和浓度测定 | 第37页 |
| ·聚丙烯酰胺凝胶电泳(SDS-PAGE) | 第37页 |
| ·免疫印迹反应 | 第37-38页 |
| ·统计学处理 | 第38页 |
| 3 结果 | 第38-40页 |
| ·两种SZ模型大鼠mPFC和海马CA1区PV表达的比较 | 第38-39页 |
| ·两种SZ模型大鼠mPFC区和海马CA1区GAD67表达的比较 | 第39-40页 |
| ·两种SZ模型大鼠mPFC和海马KCC2表达的比较 | 第40页 |
| 4 讨论 | 第40-45页 |
| ·PV | 第40-42页 |
| ·GAD67 | 第42-44页 |
| ·KCC2 | 第44-45页 |
| 5 小结 | 第45-46页 |
| 第三部分 两种SZ模型大鼠脑组织DA、Glu及其代谢产物浓度的比较 | 第46-58页 |
| 1 前言 | 第46-47页 |
| 2 材料与方法 | 第47-49页 |
| ·实验动物 | 第47页 |
| ·实验药品、试剂和器材 | 第47-48页 |
| ·试验方法 | 第48-49页 |
| ·标准液和蛋白沉淀工作液的配制 | 第48页 |
| ·样品衍生液的配制 | 第48页 |
| ·脑组织匀浆样本制备及衍生化 | 第48页 |
| ·色谱条件 | 第48-49页 |
| ·统计学处理 | 第49页 |
| 3 实验结果 | 第49-53页 |
| ·高效液相色谱-库仑阵列电化学检测下DA、DOPAC、Glu和GABA的色谱行为 | 第49-51页 |
| ·两种SZ模型大鼠mPFC区DA和DOPAC浓度的比较 | 第51页 |
| ·两种SZ模型大鼠海马DA和DOPAC浓度的比较 | 第51-52页 |
| ·两种SZ模型大鼠mPFC区Glu和GABA浓度的比较 | 第52页 |
| ·两种SZ模型大鼠海马Glu和GABA浓度的比较 | 第52-53页 |
| 4 讨论 | 第53-57页 |
| ·DA和DOPAC | 第53-55页 |
| ·Glu和GABA | 第55-56页 |
| ·DA、Glu和GABA系统间的相互作用 | 第56-57页 |
| 5 小结 | 第57-58页 |
| 第四部分 SZ发育模型成年大鼠海马脑片LTP的表达改变及KCC2的作用机制研究 | 第58-67页 |
| 1 前言 | 第58-59页 |
| 2 材料与方法 | 第59-62页 |
| ·实验动物 | 第59页 |
| ·实验药品、试剂和器材 | 第59-60页 |
| ·试验方法 | 第60-62页 |
| ·ACSF配置和预处理 | 第60-61页 |
| ·急性脑片的制备 | 第61页 |
| ·微电极的拉制 | 第61页 |
| ·灌流系统 | 第61页 |
| ·LTP诱导和记录 | 第61-62页 |
| ·免疫印记(Western blotting) | 第62页 |
| ·统计学处理 | 第62页 |
| 3 实验结果 | 第62-64页 |
| ·SZ发育模型成年大鼠海马脑片LTP表达变化及FURO和PTX的干预效应 | 第62-64页 |
| ·SZ发育模型成年大鼠海马脑片LTP诱导前后CA1区KCC2的表达变化及比较 | 第64页 |
| 4 讨论 | 第64-66页 |
| 5 小结 | 第66-67页 |
| 参考文献 | 第67-80页 |
| 附录 | 第80-118页 |
| 综述 精神分裂症GABA系统紊乱和围产期NMDA受体阻断诱导机制研究进展 | 第80-118页 |
| 实验照片 | 第118-123页 |
| 致谢 | 第123-124页 |
| 攻读博士学位期间已发表和待发表的学术论文 | 第124页 |
| 一、发表论文 | 第124页 |
| 二、参研项目 | 第124页 |
