| 摘要 | 第3-5页 |
| Abstract | 第5-6页 |
| 缩略词表 | 第10-12页 |
| 第一章 文献综述 | 第12-48页 |
| 1.1 玉米茎腐病的研究进展 | 第12-16页 |
| 1.1.1 玉米茎腐病的分布及危害 | 第12页 |
| 1.1.2 玉米茎腐病的致病菌及致病机理 | 第12-13页 |
| 1.1.3 玉米茎腐病的抗性遗传及QTL定位 | 第13-15页 |
| 1.1.4 Bin 10.04主效QTL-qRfg1的精细定位 | 第15-16页 |
| 1.2 植物中的CCT基因家族 | 第16-25页 |
| 1.2.1 CCT基因家族的结构分类 | 第17-19页 |
| 1.2.2 CCT家族基因的功能与调控 | 第19-21页 |
| 1.2.3 CCT家族基因的一因多效 | 第21-25页 |
| 1.3 植物中的转座子 | 第25-35页 |
| 1.3.1 转座子的类型与复制机制 | 第25-26页 |
| 1.3.2 转座子的功能 | 第26-35页 |
| 1.4 植物中的DNA与组蛋白甲基化 | 第35-47页 |
| 1.4.1 植物中的DNA甲基化 | 第35-41页 |
| 1.4.2 植物中的组蛋白甲基化 | 第41-46页 |
| 1.4.3 植物中DNA甲基化与组蛋白甲基化的相关性 | 第46-47页 |
| 1.5 本研究的意义 | 第47-48页 |
| 第二章 QTL-qRfg1候选基因ZmCCT的功能验证 | 第48-70页 |
| 2.1 前言 | 第48页 |
| 2.2 材料 | 第48-53页 |
| 2.2.1 植物材料 | 第48页 |
| 2.2.2 病原菌 | 第48-49页 |
| 2.2.3 转基因载体 | 第49页 |
| 2.2.4 培养基 | 第49-51页 |
| 2.2.5 试剂 | 第51页 |
| 2.2.6 溶液配制 | 第51-53页 |
| 2.3 方法 | 第53-62页 |
| 2.3.1 禾谷镰刀菌的田间接种及抗性鉴定(成熟期) | 第53-55页 |
| 2.3.2 禾谷镰刀菌的实验室接种及抗性鉴定(苗期) | 第55-56页 |
| 2.3.3 植物组织DNA的提取(SDS碱式裂解法) | 第56页 |
| 2.3.4 PCR程序及反应 | 第56-57页 |
| 2.3.5 PCR产物的克隆 | 第57页 |
| 2.3.6 质粒的小量提取 | 第57-58页 |
| 2.3.7 DNA的割胶回收 | 第58页 |
| 2.3.8 转基因载体的构建 | 第58-60页 |
| 2.3.9 质粒转化农杆菌 | 第60页 |
| 2.3.10 转基因后代鉴定 | 第60页 |
| 2.3.11 植物组织RNA的提取 | 第60-61页 |
| 2.3.12 第一链cCDA的合成 | 第61页 |
| 2.3.13 qRT-PCR | 第61-62页 |
| 2.3.14 基于转座子等位变异的候选基因关联分析 | 第62页 |
| 2.4 结果与分析 | 第62-68页 |
| 2.4.1 转座子的插入/缺失与抗病性的相关性分析 | 第62-63页 |
| 2.4.2 转基因验证ZmCCT的功能 | 第63-68页 |
| 2.5 讨论 | 第68-70页 |
| 第三章 ZmCCT的表达模式及表观遗传调控 | 第70-90页 |
| 3.1 前言 | 第70页 |
| 3.2 材料 | 第70-73页 |
| 3.2.1 植物材料 | 第70-71页 |
| 3.2.2 试剂 | 第71页 |
| 3.2.3 溶液配制 | 第71-73页 |
| 3.2.4 其他 | 第73页 |
| 3.3 方法 | 第73-76页 |
| 3.3.1 DNA甲基化的测定(Bisulfite sequencing)及分析 | 第73-74页 |
| 3.3.2 组蛋白甲基化的测定(ChIP-qPCR)及分析 | 第74-76页 |
| 3.3.3 其他方法 | 第76页 |
| 3.4 结果与分析 | 第76-88页 |
| 3.4.1 ZmCCT响应病原菌侵染的表达模式 | 第76-78页 |
| 3.4.2 ZmCCT启动子区域DNA甲基化的状态及对病原菌侵染的响应 | 第78-86页 |
| 3.4.3 ZmCCT启动子区域组蛋白甲基化的状态及对病原菌侵染的响应 | 第86-88页 |
| 3.5 讨论 | 第88-90页 |
| 第四章 ZmCCT功能的一因多效性分析 | 第90-113页 |
| 4.1 前言 | 第90页 |
| 4.2 材料 | 第90-95页 |
| 4.2.1 植物材料 | 第90-91页 |
| 4.2.2 表达载体 | 第91-92页 |
| 4.2.3 培养基 | 第92页 |
| 4.2.4 溶液配制 | 第92-95页 |
| 4.3 方法 | 第95-98页 |
| 4.3.1 开花期相关性状的调查与统计 | 第95页 |
| 4.3.2 半定量PCR与检测 | 第95页 |
| 4.3.3 载体构建 | 第95-96页 |
| 4.3.4 洋葱表皮亚细胞定位 | 第96页 |
| 4.3.5 玉米原生质体亚细胞定位 | 第96-97页 |
| 4.3.6 农杆菌转化烟草及GUS染色 | 第97页 |
| 4.3.7 拟南芥转基因(浸花法) | 第97页 |
| 4.3.8 苗期玉米的水培、营养胁迫处理及性状调查 | 第97-98页 |
| 4.3.9 其他方法 | 第98页 |
| 4.4 结果与分析 | 第98-111页 |
| 4.4.1 ZmCCT对开花期相关性状的影响 | 第98-103页 |
| 4.4.2 叶片中ZmCCT的光周期诱导表达模式 | 第103页 |
| 4.4.3 叶片中ZmCCT启动子的DNA甲基化状态 | 第103-104页 |
| 4.4.4 叶片中ZmCCT启动子的光诱导活性 | 第104-106页 |
| 4.4.5 ZmCCT对玉米非生物胁迫抗性的影响 | 第106-109页 |
| 4.4.6 ZmCCT介导的光周期反应与茎腐病抗性 | 第109-111页 |
| 4.5 讨论 | 第111-113页 |
| 第五章 结论 | 第113-114页 |
| 参考文献 | 第114-130页 |
| 附录 | 第130-151页 |
| 附录1 本研究所用引物序列 | 第130-132页 |
| 附录2. 47份玉米材料的基因型和抗性表型 | 第132-134页 |
| 附录3. 病原菌接种前后Y331-△TE和Y331中ZmCCT启动子甲基化状态发生变化的cis-element | 第134-139页 |
| 附录4. 病原菌接种前后1145中ZmCCT启动子甲基化状态发生变化的cis-element | 第139-144页 |
| 附录5. 病原菌接种前后HZS中ZmCCT启动子甲基化状态发生变化的cis-element | 第144-151页 |
| 致谢 | 第151-153页 |
| 个人简历 | 第153-154页 |
