| 摘要 | 第3-5页 |
| ABSTRACT | 第5-6页 |
| 常用缩写中英文对照 | 第12-16页 |
| 第一章 综述 | 第16-60页 |
| 1.1 应激对大脑与情绪的影响 | 第16-23页 |
| 1.1.1 应激与应激应答 | 第16-17页 |
| 1.1.2 束缚应激对行为的影响 | 第17-19页 |
| 1.1.3 应激对前额叶皮层和海马的影响 | 第19-23页 |
| 1.2 地震与精神疾病 | 第23-31页 |
| 1.2.1 地震后常见的几类精神疾病 | 第23-27页 |
| 1.2.2 地震与精神疾病相关的风险因子 | 第27-31页 |
| 1.3 脑成像技术 | 第31-38页 |
| 1.3.1 大脑能量代谢系统简介 | 第31-34页 |
| 1.3.2 脑成像技术在精神疾病中的应用与研究 | 第34-36页 |
| 1.3.3 PET技术在精神疾病中的应用与研究 | 第36-38页 |
| 1.4 抑郁症动物模型简介 | 第38-50页 |
| 1.4.1 动物模型的评价指标 | 第38-39页 |
| 1.4.2 动物模型中常用的行为学实验介绍 | 第39-42页 |
| 1.4.3 几种抑郁症动物模型介绍 | 第42-50页 |
| 1.5 模拟失重及其对大脑的影响 | 第50-57页 |
| 1.5.1 失重和微重力 | 第50-51页 |
| 1.5.2 模拟失重实验 | 第51-52页 |
| 1.5.3 模拟失重对生理功能的影响 | 第52-54页 |
| 1.5.4 模拟失重对脑部的影响 | 第54-57页 |
| 1.6 本论文的研究目的和策略 | 第57-59页 |
| 1.6.1 24小时束缚应激对小鼠影响的研究 | 第57-59页 |
| 1.6.2 模拟失重应激对猕猴影响的研究 | 第59页 |
| 本章小结 | 第59-60页 |
| 第二章 实验方法及材料 | 第60-85页 |
| 2.1 实验试剂和耗材 | 第60-63页 |
| 2.1.1 主要试剂和药品 | 第60-61页 |
| 2.1.2 试剂盒物品 | 第61页 |
| 2.1.3 qPCR引物序列 | 第61-62页 |
| 2.1.4 实验仪器和设备 | 第62-63页 |
| 2.2 小鼠饲养和束缚造模方法 | 第63-64页 |
| 2.2.1 实验动物和饲养条件 | 第63页 |
| 2.2.2 24小时束缚操作过程 | 第63-64页 |
| 2.3 猴子饲养及模拟失重造模方法 | 第64-65页 |
| 2.4 行为学测试方法 | 第65-70页 |
| 2.4.1 糖水偏好实验(SPT) | 第65-66页 |
| 2.4.2 旷场试验(OFT) | 第66-67页 |
| 2.4.3 高架十字迷宫实验(EPMT) | 第67页 |
| 2.4.4 社交能力测试(sociabilitytest) | 第67-68页 |
| 2.4.5 强迫游泳实验(FST) | 第68页 |
| 2.4.6 前脉冲抑制实验(prepulse inhibition,PPI) | 第68-69页 |
| 2.4.7 场景恐惧实验(contextual fear conditioning,CFC) | 第69-70页 |
| 2.5 分子生物学实验方法 | 第70-73页 |
| 2.5.1 脑组织总RNA提取 | 第70-71页 |
| 2.5.2 总RNA质量鉴定及浓度检测 | 第71页 |
| 2.5.3 RNA反转录反应(RT-PCR) | 第71-72页 |
| 2.5.4 实时定量PCR反应(real-time quantitative PCR,qRT-PCR) | 第72-73页 |
| 2.6 细胞及分子生物学实验方法 | 第73-80页 |
| 2.6.1 取血及分离血清 | 第73页 |
| 2.6.2 血清皮质酮激素水平测定 | 第73-74页 |
| 2.6.3 BrdU/IdU注射 | 第74-75页 |
| 2.6.4 脑组织灌流固定 | 第75-76页 |
| 2.6.5 冰冻切片及免疫荧光染色 | 第76-78页 |
| 2.6.6 ATP相对定量测定 | 第78-80页 |
| 2.7 小动物正电子发射扫描(small-animal PET)实验 | 第80-82页 |
| 2.7.1 主要试剂和耗材 | 第81页 |
| 2.7.2 小动物PET显像 | 第81-82页 |
| 2.8 表达谱芯片实验方法 | 第82-83页 |
| 2.9 代谢组学分析 | 第83-84页 |
| 2.10 数据处理与分析 | 第84页 |
| 本章小结 | 第84-85页 |
| 第三章 实验结果 | 第85-118页 |
| 3.1 24小时束缚诱导应激小鼠产生抑郁样表型及其分子机制的研究 | 第85-108页 |
| 3.1.1 24小时束缚对小鼠血清中皮质酮激素水平的影响 | 第85-86页 |
| 3.1.2 24小时束缚对小鼠体重的影响 | 第86-88页 |
| 3.1.3 24小时束缚对小鼠行为的影响 | 第88-97页 |
| 3.1.4 24小时束缚对小鼠脑部糖代谢水平的影响 | 第97-99页 |
| 3.1.6 24小时束缚对小鼠海马成年神经新生的影响 | 第99-101页 |
| 3.1.7 24小时束缚后前额叶皮质和海马组织的差异表达基因变化 | 第101-105页 |
| 3.1.8 盐酸氟西汀对24小时束缚小鼠模型的治疗效果 | 第105-108页 |
| 3.2 模拟失重对猕猴脑组织代谢的影响 | 第108-117页 |
| 3.2.1 模拟失重对猕猴体重的影响 | 第108-109页 |
| 3.2.2 模拟失重对猕猴海马区域代谢组学研究 | 第109-115页 |
| 3.2.3 模拟失重猕猴对成年海马区神经新生的影响 | 第115-117页 |
| 本章小结 | 第117-118页 |
| 第四章 讨论与总结 | 第118-128页 |
| 4.1 地震后被困与精神疾病的发生 | 第118-119页 |
| 4.2 将24小时束缚小鼠作为抑郁小鼠模型 | 第119-120页 |
| 4.3 24小时束缚对小鼠的多方面影响及其潜在机制讨论 | 第120-124页 |
| 4.3.1 24小时束缚对小鼠生理学的影响 | 第120页 |
| 4.3.2 24小时束缚对小鼠行为学的影响 | 第120-121页 |
| 4.3.3 24小时束缚对大脑能量代谢的影响 | 第121-122页 |
| 4.3.4 24小时束缚对海马成年神经新生的影响 | 第122-123页 |
| 4.3.5 24小时束缚对小鼠PFC和海马的基因表达的影响 | 第123-124页 |
| 4.4 模拟失重对脑部的影响 | 第124-128页 |
| 参考文献 | 第128-164页 |
| 附表 | 第164-219页 |
| 附表1.束缚小鼠长期组额叶皮层中表达上调基因富集的GO生物过程( BP) (FDR<0.05) | 第164-171页 |
| 附表2.束缚小鼠长期组额叶皮层中表达下调基因富集的GO生物过程(BP) (FDR<0.05) | 第171-172页 |
| 附表3.束缚小鼠短期组额叶皮层中表达上调基因富集的GO生物过程(BP) (FDR<0.05) | 第172-183页 |
| 附表4.束缚小鼠短期组额叶皮层中表达下调基因富集的GO生物过程(BP) (FDR<0.05) | 第183-189页 |
| 附表5.束缚小鼠长期组海马中表达上调基因富集的GO生物过程(BP)(FDR<0.05) | 第189-200页 |
| 附表6.束缚小鼠长期海马层中表达下调基因富集的GO生物过程(BP) | 第200-212页 |
| 附表7.束缚小鼠短期组海马中表达上调基因富集的GO生物过程(BP) | 第212-217页 |
| 附表8.束缚小鼠短期组海马中表达下调基因富集的GO生物过程(BP) | 第217-219页 |
| 致谢 | 第219-221页 |
| 博士期间科研成果 | 第221-223页 |
