摘要 | 第3-5页 |
Abstract | 第5-6页 |
缩略语表 | 第10-11页 |
第1章 文献综述 | 第11-21页 |
1.1 胰岛素抵抗机制的相关研究进展 | 第11-15页 |
1.1.1 胰岛素信号转导通路的研究 | 第11-13页 |
1.1.2 诱发胰岛素抵抗产生的原因 | 第13-15页 |
1.2 山茱萸的药理研究进展 | 第15-19页 |
1.2.1 抗炎杀菌镇痛作用 | 第16页 |
1.2.2 免疫作用 | 第16页 |
1.2.3 抗癌抗肿瘤 | 第16-17页 |
1.2.4 抗氧化衰老 | 第17页 |
1.2.5 抗心律失常 | 第17-18页 |
1.2.6 改善代谢综合征 | 第18-19页 |
1.3 本研究的目的及意义 | 第19-21页 |
第2章 胰岛素抵抗小鼠模型的建立与评价 | 第21-29页 |
2.1 材料和仪器 | 第21-22页 |
2.1.1 实验动物 | 第21页 |
2.1.2 仪器与试剂 | 第21-22页 |
2.1.3 饲料配制 | 第22页 |
2.2 实验方法 | 第22-24页 |
2.2.1 动物分组 | 第22-23页 |
2.2.2 材料处理方法 | 第23页 |
2.2.3 石蜡切片的制作及HE染色过程 | 第23-24页 |
2.2.4 统计学处理方法 | 第24页 |
2.3 实验结果 | 第24-27页 |
2.3.1 正常组和模型组小鼠状态 | 第24页 |
2.3.2 正常组和模型组小鼠体重的变化 | 第24-25页 |
2.3.3 正常组和模型组小鼠随机血糖的变化 | 第25页 |
2.3.4 正常组和模型组小鼠口服糖耐量的变化 | 第25-26页 |
2.3.5 正常组和模型组小鼠血清胰岛素水平及HOMA-IR、ISI | 第26页 |
2.3.6 正常组和模型组小鼠血脂水平 | 第26-27页 |
2.3.7 正常组和模型组小鼠HE染色结果 | 第27页 |
2.4 讨论 | 第27-29页 |
第3章 山茱萸提取物对胰岛素抵抗小鼠糖脂代谢的影响 | 第29-37页 |
3.1 材料和仪器 | 第29-31页 |
3.1.1 实验动物 | 第29页 |
3.1.2 仪器与试剂 | 第29-30页 |
3.1.3 饲料配制 | 第30页 |
3.1.4 实验材料 | 第30-31页 |
3.2 实验方法 | 第31-32页 |
3.2.1 动物分组 | 第31页 |
3.2.2 材料处理方法 | 第31-32页 |
3.2.3 统计学处理方法 | 第32页 |
3.3 实验结果 | 第32-35页 |
3.3.1 山茱萸提取物对IR小鼠体重、随机血糖和血清胰岛素的影响 | 第32-33页 |
3.3.2 山茱萸提取物对IR小鼠口服糖耐量的影响 | 第33页 |
3.3.3 山茱萸提取物对IR小鼠的TC、LDL、HDL和TG水平的影响 | 第33-34页 |
3.3.4 山茱萸提取物对IR小鼠肝脏病理组织的HE染色结果 | 第34-35页 |
3.4 讨论 | 第35-37页 |
第4章 山茱萸提取物对胰岛素抵抗小鼠PI3K/AKT信号通路相关mRNA及蛋白表达的影响 | 第37-53页 |
4.1 材料和仪器 | 第38-40页 |
4.1.1 实验材料 | 第38页 |
4.1.2 仪器与试剂 | 第38-39页 |
4.1.3 主要试剂配制方法 | 第39-40页 |
4.2 实验方法 | 第40-46页 |
4.2.1 动物分组和实验 | 第40页 |
4.2.2 肝脏组织中InsR、IRS、PI3K、AKT和GLUT4 mRNA表达的测定 | 第40-43页 |
4.2.3 肝脏组织中InsR、IRS、PI3K、AKT和GLUT4蛋白表达的测定 | 第43-46页 |
4.2.4 骨骼肌组织中PI3K和GLUT4蛋白表达的测定 | 第46页 |
4.2.5 统计学处理方法 | 第46页 |
4.3 实验结果 | 第46-51页 |
4.3.1 山茱萸提取物对IR小鼠肝脏组织中InsR、IRS、PI3K、AKT和GLUT4mRNA表达的影响 | 第46-48页 |
4.3.2 山茱萸提取物对IR小鼠肝脏组织中InsR、IRS、PI3K、AKT和GLUT4的蛋白表达的影响 | 第48-50页 |
4.3.3 山茱萸提取物对IR小鼠骨骼肌组织中PI3K和GLUT4蛋白表达的影响 | 第50-51页 |
4.4 讨论 | 第51-53页 |
第5章 结论 | 第53-55页 |
参考文献 | 第55-69页 |
致谢 | 第69-71页 |
攻读硕士学位期间的研究成果 | 第71页 |