| 摘要 | 第5-7页 |
| abstract | 第7-9页 |
| 第一章 文献综述 | 第13-23页 |
| 1.1 1-MCP处理保鲜技术研究进展 | 第13-14页 |
| 1.1.1 1-MCP的作用机理 | 第13页 |
| 1.1.2 影响1-MCP作用效果的因素 | 第13-14页 |
| 1.1.3 1-MCP在切花保鲜方面的应用 | 第14页 |
| 1.2 乙烯调控切花衰老机制的研究进展 | 第14-20页 |
| 1.2.1 乙烯的信号转导途径与受体基因 | 第14-16页 |
| 1.2.2 外源乙烯对内源乙烯生物合成的影响 | 第16页 |
| 1.2.3 乙烯对蛋白质降解的影响 | 第16-17页 |
| 1.2.4 乙烯对开花和衰老相关酶基因表达的影响 | 第17页 |
| 1.2.5 乙烯对能量代谢的影响 | 第17-18页 |
| 1.2.6 乙烯对植物细胞程序化死亡(PCD)进程的影响 | 第18-20页 |
| 1.3 月季切花的贮藏研究 | 第20页 |
| 1.4 本论文的研究目的与意义 | 第20-23页 |
| 1.4.1 目的意义 | 第20-21页 |
| 1.4.2 研究内容 | 第21-23页 |
| 第二章 采前1-MCP喷施参数筛选 | 第23-29页 |
| 2.1 材料与方法 | 第23-25页 |
| 2.1.1 试验材料 | 第23页 |
| 2.1.2 处理方法 | 第23-24页 |
| 2.1.3 开花指数的标准 | 第24页 |
| 2.1.4 瓶插寿命测定 | 第24-25页 |
| 2.1.5 鲜重损失率测定 | 第25页 |
| 2.1.6 最大花径的测定 | 第25页 |
| 2.1.7 数据分析 | 第25页 |
| 2.2 结果与分析 | 第25-27页 |
| 2.2.1 施用浓度的粗选及最佳处理时期的筛选 | 第25-26页 |
| 2.2.2 施用浓度的细选及最佳采收时期的筛选 | 第26-27页 |
| 2.3 讨论 | 第27-28页 |
| 2.4 小结 | 第28-29页 |
| 第三章 采前1-MCP处理对切花月季采后生理及冷藏寿命的影响 | 第29-41页 |
| 3.1 材料与方法 | 第29-31页 |
| 3.1.1 试验材料 | 第29页 |
| 3.1.2 处理方法 | 第29-30页 |
| 3.1.3 冷藏寿命的测定 | 第30页 |
| 3.1.4 瓶插寿命和最大花径的测定 | 第30页 |
| 3.1.5 呼吸强度和乙烯释放率的测定 | 第30页 |
| 3.1.6 ACC含量及ACC氧化酶(ACO)活性的测定 | 第30-31页 |
| 3.1.7 花色素苷含量的测定 | 第31页 |
| 3.1.8 可溶性蛋白含量的测定 | 第31页 |
| 3.1.9 脂氧合酶(LOX)活性的测定 | 第31页 |
| 3.1.10 数据分析 | 第31页 |
| 3.2 结果与分析 | 第31-37页 |
| 3.2.1 冷藏寿命、瓶插寿命及最大花径 | 第31-34页 |
| 3.2.2 呼吸强度及乙烯释放率 | 第34-35页 |
| 3.2.3 ACC含量及ACO活性 | 第35页 |
| 3.2.4 花色素苷含量 | 第35-36页 |
| 3.2.5 可溶性蛋白含量 | 第36-37页 |
| 3.2.6 LOX活性 | 第37页 |
| 3.3 讨论 | 第37-39页 |
| 3.4 小结 | 第39-41页 |
| 第四章 采前1-MCP及乙烯利处理对切花月季瓶插寿命及能量代谢、抗氧化酶活性的影响 | 第41-63页 |
| 4.1 材料与方法 | 第41-45页 |
| 4.1.1 试验材料 | 第41页 |
| 4.1.2 处理方法 | 第41-42页 |
| 4.1.3 瓶插寿命、最大花径及开花指数的测定 | 第42页 |
| 4.1.4 乙烯释放率和呼吸强度的测定 | 第42页 |
| 4.1.5 鲜重增加率的测定 | 第42页 |
| 4.1.6 干重的测定 | 第42页 |
| 4.1.7 丙二醛(MDA)含量的测定 | 第42页 |
| 4.1.8 超氧化物歧化酶(SOD)、过氧化物酶(POD)、多酚氧化酶(PPO)及抗坏血酸氧化酶(AO)的测定 | 第42-43页 |
| 4.1.9 ATP含量及能荷(EC)的测定 | 第43页 |
| 4.1.10 H~+-ATP酶、Ca~(2+)-ATP酶、琥珀酸脱氢酶(SDH)及细胞色素c氧化酶(CCO)活性的测定 | 第43页 |
| 4.1.11 过氧化氢(H_2O_2)及超氧阴离子(O_2`~-)含量测定 | 第43-44页 |
| 4.1.12 过氧化氢(H_2O_2)及超氧阴离子(O_2`~-)的组织定位 | 第44页 |
| 4.1.13 花瓣的超显微结构观察 | 第44页 |
| 4.1.14 总RNA提取及基因表达量测定 | 第44-45页 |
| 4.1.15 数据分析 | 第45页 |
| 4.2 结果与分析 | 第45-59页 |
| 4.2.1 采前1-MCP及乙烯利处理对瓶插寿命及最大花径的影响 | 第45-46页 |
| 4.2.2 采前1-MCP及乙烯利处理对乙烯释放率及呼吸强度的影响 | 第46-47页 |
| 4.2.3 采前1-MCP及乙烯利处理对丙二醛(MDA)含量及超氧化物歧化酶(SOD)、过氧化物酶(POD)、多酚氧化酶(PPO)活性的影响 | 第47-49页 |
| 4.2.4 采前1-MCP及乙烯利处理对ATP含量、能荷值(EC)及能量代谢相关酶活性的影响 | 第49-50页 |
| 4.2.5 采前1-MCP及乙烯利处理对RhATPs3和RhSDH1基因相对表达量的影响 | 第50-52页 |
| 4.2.6 ATP及DNP处理对切花月季瓶插寿命及最大花径的影响 | 第52-53页 |
| 4.2.7 ATP及DNP处理对切花月季开花指数的影响 | 第53页 |
| 4.2.8 ATP及DNP处理对切花月季鲜重变化的影响 | 第53-54页 |
| 4.2.9 ATP及DNP处理对切花月季干重变化的影响 | 第54-55页 |
| 4.2.10 ATP及DNP处理对切花月季ATP含量及能荷的影响 | 第55页 |
| 4.2.11 ATP及DNP处理对切花月季过氧化氢(H_2O_2)及超氧阴离子(O_2`~-)的含量及组织定位的影响 | 第55-57页 |
| 4.2.12 ATP及DNP处理对切花月季超显微结构的影响 | 第57-59页 |
| 4.3 讨论 | 第59-62页 |
| 4.4 小结 | 第62-63页 |
| 第五章 采前1-MCP及乙烯利处理对切花月季瓶插过程中蛋白质表达的影响 | 第63-83页 |
| 5.1 材料与方法 | 第63-65页 |
| 5.1.1 试验材料 | 第63页 |
| 5.1.2 处理方法 | 第63页 |
| 5.1.3 瓶插寿命的测定 | 第63-64页 |
| 5.1.4 总蛋白的提取及ITRAQ标记 | 第64页 |
| 5.1.5 高pH反相分离及LC-MS/MS分析 | 第64页 |
| 5.1.6 蛋白鉴定及定量 | 第64页 |
| 5.1.7 数据分析 | 第64-65页 |
| 5.2 结果与分析 | 第65-77页 |
| 5.2.1 乙烯调控处理对切花瓶插寿命的影响 | 第65页 |
| 5.2.2 蛋白质鉴定 | 第65-66页 |
| 5.2.3 切花正常开放衰老过程中的差异表达蛋白(DEPs)分析 | 第66-70页 |
| 5.2.4 切花衰老过程中响应乙烯调控的差异表达蛋白(DEPs)分析 | 第70-75页 |
| 5.2.5 蛋白相互作用分析 | 第75-77页 |
| 5.3 讨论 | 第77-81页 |
| 5.4 小结 | 第81-83页 |
| 第六章 讨论、结论与创新点 | 第83-87页 |
| 6.1 讨论 | 第83-84页 |
| 6.2 结论 | 第84-85页 |
| 6.3 创新点 | 第85-87页 |
| 参考文献 | 第87-97页 |
| 附录 | 第97-107页 |
| 缩略词 | 第107-109页 |
| 致谢 | 第109-111页 |
| 作者简介 | 第111页 |
