| 摘要 | 第4-6页 |
| ABSTRACT | 第6-7页 |
| 第1章 绪论 | 第14-41页 |
| 1.1 课题背景和研究的目的及意义 | 第14-18页 |
| 1.1.1 课题背景 | 第14-16页 |
| 1.1.2 项目来源 | 第16页 |
| 1.1.3 研究的目的和意义 | 第16-18页 |
| 1.2 膜污染的形成机制和控制方法 | 第18-29页 |
| 1.2.1 膜污染的形成机制 | 第18-21页 |
| 1.2.2 膜污染控制技术及其研究现状 | 第21-29页 |
| 1.3 微生物群体感应系统及其研究现状 | 第29-35页 |
| 1.3.1 微生物群体感应系统及信号分子 | 第29-33页 |
| 1.3.2 典型革兰氏阴性菌和革兰氏阳性菌群体感应系统与生物膜的关系 | 第33-34页 |
| 1.3.3 细菌药物外排泵与细菌群体感应系统的关系 | 第34-35页 |
| 1.4 代谢解偶联剂的研究现状 | 第35-39页 |
| 1.4.1 代谢解偶联剂在污泥减量工艺中的研究现状 | 第35-37页 |
| 1.4.2 代谢解偶联剂在MBR系统中的研究现状 | 第37页 |
| 1.4.3 代谢解偶联剂控制MBR膜污染有待解决的主要问题 | 第37-39页 |
| 1.5 研究的主要内容与技术路线 | 第39-41页 |
| 第2章 材料与方法 | 第41-61页 |
| 2.1 实验材料 | 第41-44页 |
| 2.1.1 实验菌种 | 第41页 |
| 2.1.2 膜材料 | 第41页 |
| 2.1.3 实验试剂 | 第41-43页 |
| 2.1.4 培养基和模拟废水 | 第43-44页 |
| 2.1.5 活性污泥 | 第44页 |
| 2.2 实验装置与实验方法 | 第44-50页 |
| 2.2.1 平板膜过滤系统及运行条件 | 第44-45页 |
| 2.2.2 生物膜抑制系统及运行条件 | 第45-46页 |
| 2.2.3 膜生物反应系统及运行条件 | 第46-48页 |
| 2.2.4 细菌在滤膜表面的附着和生物膜培养 | 第48页 |
| 2.2.5 细菌在细胞培养板中的生物膜培养 | 第48-49页 |
| 2.2.6 实验仪器和设备 | 第49-50页 |
| 2.3 检测指标和分析方法 | 第50-58页 |
| 2.3.1 群体感应信号分子 | 第50-52页 |
| 2.3.2 胞外聚合物的提取与分析 | 第52-53页 |
| 2.3.3 细菌絮凝性和表面热力学分析 | 第53-56页 |
| 2.3.4 污泥性质分析 | 第56-57页 |
| 2.3.5 生物膜显微镜分析 | 第57页 |
| 2.3.6 统计学方法 | 第57-58页 |
| 2.4 分子生物学分析 | 第58-61页 |
| 2.4.1 实时荧光定量PCR | 第58-59页 |
| 2.4.2 高通量测序 | 第59-61页 |
| 第3章 解偶联剂对于革兰氏阴性菌生物膜形成的抑制效果与机制分析 | 第61-80页 |
| 3.1 引言 | 第61页 |
| 3.2 解偶联剂对P.aeruginosaPAO1生物膜形成的抑制作用 | 第61-67页 |
| 3.2.1 TCS对P.aeruginosaPAO1生物膜抑制的有效浓度 | 第62-63页 |
| 3.2.2 TCS浓度对P.aeruginosaPAO1生长的影响 | 第63页 |
| 3.2.3 TCS对P.aeruginosaPAO1生物附着的抑制效果 | 第63-64页 |
| 3.2.4 TCS对P.aeruginosaPAO1生物膜形成过程的抑制效果 | 第64-67页 |
| 3.3 不同反应系统内TCS对P.aeruginosaPAO1生物膜的调控作用 | 第67-73页 |
| 3.3.1 CDC系统中TCS对P.aeruginosaPAO1生物膜的抑制 | 第67-69页 |
| 3.3.2 平板膜过滤系统中TCS对P.aeruginosaPAO1生物膜的影响 | 第69-73页 |
| 3.4 解偶联剂对P.aeruginosaPAO1生物膜抑制机制的分析 | 第73-78页 |
| 3.4.1 TCS对P.aeruginosaPAO1细菌EPS分泌的影响 | 第73-74页 |
| 3.4.2 P.aeruginosaPAO1运动性分析 | 第74-75页 |
| 3.4.3 TCS对P.aeruginosaPAO1生物膜的抑制机制分析 | 第75-78页 |
| 3.5 本章小结 | 第78-80页 |
| 第4章 解偶联剂对于革兰氏阳性菌生物膜形成的抑制效果与机制分析 | 第80-106页 |
| 4.1 引言 | 第80页 |
| 4.2 解偶联剂对B.subtilis生物膜形成的抑制效果 | 第80-85页 |
| 4.2.1 TCS对B.subtilis细菌生长的影响 | 第81-82页 |
| 4.2.2 细胞培养板中TCS对B.subtilis生物膜形成的抑制 | 第82-83页 |
| 4.2.3 TCS对B.subtilis在滤膜表面生物附着的抑制作用 | 第83-84页 |
| 4.2.4 TCS对B.subtilis在滤膜表面生物膜形成的抑制作用 | 第84-85页 |
| 4.3 解偶联剂对B.subtilis细菌EPS分泌的影响 | 第85-92页 |
| 4.3.1 三维荧光光谱-平行因子分析 | 第85-89页 |
| 4.3.2 激光共聚焦显微镜成像分析 | 第89-91页 |
| 4.3.3 胞外蛋白和胞外多糖的变化 | 第91-92页 |
| 4.4 解偶联剂对B.subtilis运动性和絮凝性的影响 | 第92-101页 |
| 4.4.1 B.subtilis运动性分析 | 第92-93页 |
| 4.4.2 B.subtilis絮体粒径分布 | 第93-95页 |
| 4.4.3 B.subtilis表面电性分析 | 第95-96页 |
| 4.4.4 B.subtilis絮凝性变化 | 第96-97页 |
| 4.4.5 亲疏水性和表面热力学分析 | 第97-101页 |
| 4.5 解偶联剂对B.subtilis生物膜抑制机制的分析 | 第101-104页 |
| 4.6 本章小结 | 第104-106页 |
| 第5章 解偶联剂对MBR系统中膜污染的控制效果及其机制分析 | 第106-131页 |
| 5.1 引言 | 第106-107页 |
| 5.2 解偶联剂对MBR系统膜污染的控制效果 | 第107-111页 |
| 5.2.1 污染周期和跨膜压力的变化 | 第107-108页 |
| 5.2.2 膜表面附着生物量 | 第108-111页 |
| 5.3 解偶联剂对MBR系统中信号分子和EPS分泌的调控作用 | 第111-116页 |
| 5.3.1 TCS对MBR中信号分子的影响 | 第111-114页 |
| 5.3.2 TCS对污泥EPS分泌的抑制作用 | 第114-116页 |
| 5.4 解偶联剂对MBR系统运行及污泥特性的影响 | 第116-123页 |
| 5.4.1 对污泥增长和污染物去除的影响 | 第116-120页 |
| 5.4.2 污泥特性的变化 | 第120-123页 |
| 5.5 解偶联剂对MBR系统微生物群落结构的影响 | 第123-129页 |
| 5.5.1 污泥样品与生物膜样品中微生物群落的丰度与多样性 | 第124-125页 |
| 5.5.2 微生物群落演替 | 第125-128页 |
| 5.5.3 群体感应猝灭细菌的相对丰度 | 第128-129页 |
| 5.6 本章小结 | 第129-131页 |
| 结论 | 第131-132页 |
| 创新点 | 第132页 |
| 展望 | 第132-134页 |
| 参考文献 | 第134-149页 |
| 攻读博士学位期间发表的论文及其它成果 | 第149-151页 |
| 致谢 | 第151-153页 |
| 个人简历 | 第153页 |
