摘要 | 第3-5页 |
Abstract | 第5-6页 |
第一章 绪论 | 第9-17页 |
1.1 桦褐孔菌的研究 | 第9页 |
1.1.1 桦褐孔菌简介 | 第9页 |
1.1.2 桦褐孔菌的组分 | 第9页 |
1.2 桦褐孔菌多糖 | 第9-12页 |
1.2.1 桦褐孔菌多糖提取 | 第9页 |
1.2.2 桦褐孔菌多糖的分离纯化 | 第9-10页 |
1.2.3 桦褐孔菌多糖结构 | 第10-11页 |
1.2.4 桦褐孔菌多糖生物活性 | 第11-12页 |
1.3 多糖的硫酸化修饰 | 第12-15页 |
1.3.1 多糖硫酸化修饰方法 | 第12-13页 |
1.3.2 硫酸化修饰多糖的生物活性 | 第13-15页 |
1.4 本课题的研究意义及内容 | 第15-17页 |
1.4.1 研究意义 | 第15页 |
1.4.2 研究内容 | 第15-17页 |
第二章 桦褐孔菌多糖的分离纯化及结构分析 | 第17-30页 |
2.1 前言 | 第17页 |
2.2 实验材料与仪器 | 第17-18页 |
2.2.1 实验材料 | 第17页 |
2.2.2 实验试剂 | 第17页 |
2.2.3 实验仪器 | 第17-18页 |
2.3 实验方法 | 第18-22页 |
2.3.1 多糖的制备 | 第18页 |
2.3.2 多糖的分离纯化 | 第18-19页 |
2.3.3 多糖的结构研究 | 第19-22页 |
2.4 实验结果与分析 | 第22-29页 |
2.4.1 多糖的分离与纯化 | 第22-24页 |
2.4.2 多糖的结构研究 | 第24-29页 |
2.5 本章小结 | 第29-30页 |
第三章 桦褐孔菌多糖的降血糖活性研究 | 第30-42页 |
3.1 前言 | 第30页 |
3.2 实验材料与仪器 | 第30-31页 |
3.2.1 实验材料 | 第30页 |
3.2.2 实验试剂 | 第30-31页 |
3.2.3 实验仪器 | 第31页 |
3.3 实验方法 | 第31-34页 |
3.3.1 多糖对α-葡萄糖苷酶抑制率影响 | 第31-33页 |
3.3.2 HepG2细胞实验 | 第33-34页 |
3.3.3 统计分析 | 第34页 |
3.4 实验结果与分析 | 第34-41页 |
3.4.1 多糖对α-葡萄糖苷酶抑制率影响 | 第34-36页 |
3.4.2 多糖的α-葡萄糖苷酶抑制类型研究 | 第36-37页 |
3.4.3 不同浓度的多糖样品对HepG2细胞活性的影响 | 第37-38页 |
3.4.4 不同浓度多糖对正常HepG2细胞葡萄糖消耗的影响 | 第38-39页 |
3.4.5 多糖对胰岛素抵抗HepG2细胞葡萄糖消耗影响 | 第39-41页 |
3.5 本章小结 | 第41-42页 |
第四章 硫酸化修饰对多糖降血糖活性的影响 | 第42-51页 |
4.1 前言 | 第42页 |
4.2 材料与仪器 | 第42-43页 |
4.2.1 实验材料 | 第42页 |
4.2.2 实验试剂 | 第42页 |
4.2.3 实验仪器 | 第42-43页 |
4.3 实验方法 | 第43-45页 |
4.3.1 多糖的硫酸化修饰 | 第43页 |
4.3.2 硫酸基取代度的测定 | 第43-44页 |
4.3.3 紫外光谱分析 | 第44页 |
4.3.4 红外光谱分析 | 第44页 |
4.3.5 硫酸酯化多糖的α-葡糖苷酶抑制率 | 第44-45页 |
4.3.6 硫酸酯化多糖对HepG2细胞活性的影响 | 第45页 |
4.3.7 硫酸酯化多糖对HePG2细胞葡萄糖消耗的影响 | 第45页 |
4.3.8 统计分析 | 第45页 |
4.4 实验结果分析 | 第45-50页 |
4.4.1 紫外光谱分析 | 第45-46页 |
4.4.2 红外光谱分析 | 第46-47页 |
4.4.3 硫酸酯化多糖对α-葡萄糖苷酶抑制率的影响 | 第47-48页 |
4.4.4 硫酸酯化多糖对HepG2细胞活性的影响 | 第48页 |
4.4.5 硫酸酯化多糖对HepG2细胞葡萄糖消耗的影响 | 第48-50页 |
4.5 本章小结 | 第50-51页 |
第五章 结论与展望 | 第51-53页 |
5.1 结论 | 第51-52页 |
5.2 展望 | 第52-53页 |
参考文献 | 第53-59页 |
在读期间发表的学术论文及研究成果 | 第59-60页 |
致谢 | 第60页 |