| 缩略语表 | 第7-9页 |
| 摘要 | 第9-13页 |
| Abstract | 第13-17页 |
| 前言 | 第18-19页 |
| 第一章 冰冻保存对血小板损伤的研究 | 第19-32页 |
| 1.1 实验材料 | 第20-21页 |
| 1.1.1 实验器材 | 第20页 |
| 1.1.2 实验试剂 | 第20页 |
| 1.1.3 试剂配制 | 第20-21页 |
| 1.2 实验方法 | 第21-25页 |
| 1.2.1 单采血小板的采集与分组 | 第21页 |
| 1.2.2 冰冻血小板的制备与复融 | 第21页 |
| 1.2.3 血小板平均体积与分布宽度测定 | 第21-22页 |
| 1.2.4 血小板储存过程中Lac测定 | 第22页 |
| 1.2.5 血小板储存过程中LDH测定 | 第22-23页 |
| 1.2.6 血小板的活化与凋亡测定 | 第23页 |
| 1.2.7 血小板储存过程中sCD40L和RANTES的分泌 | 第23-25页 |
| 1.2.8 统计学分析 | 第25页 |
| 1.3 实验结果 | 第25-29页 |
| 1.3.1 血小板样本 | 第25页 |
| 1.3.2 血小板储存过程中MPV和PDW的改变 | 第25-26页 |
| 1.3.3 血小板储存过程中LDH和Lac的改变 | 第26页 |
| 1.3.4 血小板储存过程中的活化与凋亡 | 第26-28页 |
| 1.3.5 血小板储存过程中sCD40L和RANTES表达 | 第28-29页 |
| 1.4 讨论 | 第29-30页 |
| 本章小结 | 第30-32页 |
| 第二章 血小板对肝巨噬细胞炎性损伤的影响 | 第32-45页 |
| 2.1 实验材料 | 第32-34页 |
| 2.1.1 实验器材 | 第32-33页 |
| 2.1.2 实验试剂 | 第33页 |
| 2.1.3 试剂配制 | 第33-34页 |
| 2.2 实验方法 | 第34-37页 |
| 2.2.1 THP-1细胞的培养 | 第34页 |
| 2.2.2 PMA诱导THP-1细胞条件优化 | 第34-35页 |
| 2.2.3 LPS刺激THP-1细胞的条件优化 | 第35-36页 |
| 2.2.4 THP-1细胞对血小板的粘附与吞噬 | 第36-37页 |
| 2.2.5 血小板对THP-1细胞的活化 | 第37页 |
| 2.3 实验结果 | 第37-42页 |
| 2.3.1 PMA诱导THP-1细胞条件 | 第37-40页 |
| 2.3.2 LPS刺激THP-1细胞条件优化 | 第40页 |
| 2.3.3 THP-1细胞对血小板的粘附与吞噬 | 第40-41页 |
| 2.3.4 血小板促进THP-1细胞释放炎性因子 | 第41-42页 |
| 2.4 讨论 | 第42-44页 |
| 本章小结 | 第44-45页 |
| 第三章 冰冻血小板促进THP-1活化的机制 | 第45-54页 |
| 3.1 实验材料 | 第45-46页 |
| 3.1.1 实验器材 | 第45页 |
| 3.1.2 实验试剂 | 第45-46页 |
| 3.1.3 试剂配制 | 第46页 |
| 3.2 实验方法 | 第46-48页 |
| 3.2.1 THP-1表面受体表达 | 第46-47页 |
| 3.2.2 Annexin-V浓度优化 | 第47页 |
| 3.2.3 Anti-P-Selectin浓度优化 | 第47页 |
| 3.2.4 Annexin-V和Anti-P-Selectin对CPPs与THP-1细胞粘附与吞噬的影响 | 第47-48页 |
| 3.2.5 Annexin-V和Anti-P-Selectin对THP-1细胞炎性因子分泌的影响 | 第48页 |
| 3.3 实验结果 | 第48-51页 |
| 3.3.1 THP-1细胞表面受体表达 | 第48-49页 |
| 3.3.2 Annexin-V浓度优化 | 第49页 |
| 3.3.3 Anti-P-selectin浓度优化 | 第49-50页 |
| 3.3.4 Annexin-V 和 Anti-P-Selectin 作用后 THP-1 细胞对 CPPs 的粘附与吞噬情况 | 第50页 |
| 3.3.5 Annexin-V 和 Anti-P-Selectin 抑制冰冻血小板与 THP-1 细胞作用后促炎因子表达 | 第50-51页 |
| 3.4 讨论 | 第51-53页 |
| 本章小结 | 第53-54页 |
| 全文总结 | 第54-55页 |
| 参考文献 | 第55-59页 |
| 个人简历 | 第59-60页 |
| 致谢 | 第60页 |
